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北京石油化工学院2026年研究生招生接收调剂公告
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Mis_Q

版主

优秀!!有木有!!!优秀!!有木有!!!优秀!!有木有!!!优秀!!有木有!!!

[求助] (基因克隆)双酶切结果与目的条带大小不一致,求有经验的人帮帮我。 已有2人参与

1.  目的条带加酶切位点一共1200bp左右,酶切位点是Bgl II (Buffer 3.1)和Nhe I(Buffer 2.1),内切酶是NEB公司的。克隆载体为TaKaRa 的 T-Vector pMD 19 ( Simple ), 载体长度为2692 bp。
   2.  将目的产物连接到克隆载体后,转化大肠杆菌 (DH5α),蓝白斑筛选,挑取白色单个菌落后过夜培养,提取质粒。
   3.  对菌液和质粒都进行PCR验证,结果均出现目的条带。

以上为质粒PCR图片
   4.  检测质粒浓度后参考NEB提供体系先分别进行两个酶的单酶切。
                         体系:  酶                         1 μl ;
                                     DNA                      1 μg;  
                                     10*NEBuffer          5 μl;
                                      总体系                  50 μl                    反应条件:37℃ 水浴过夜,Bgl II 加TaKaRa 6*Load Buffer终止反应,Nhe I  65℃  20min 使用PCR仪终止反应。
单酶切结果: 琼脂糖凝胶结果发现,两个酶均出现2000 bp左右片段,同时与质粒一起跑胶,发现条带比质粒稍大一点。

  5.    之前也试过分步双酶切,先Bgl II 37℃过夜,然后琼脂糖凝胶回收,再Nhe I 37℃过夜,结果凝胶结果完全没有条带,怀疑割胶回收损失太大。
   
  6.  先进行Nhe I 酶切(50ul体系),然后吸出6ul,再加入Bgl II和Buffer 3.1共6ul,补足50ul后继续酶切,这次仍然没有出现目的大小片段。

   37℃水浴过夜,pcr仪5h,都试过了,每次出来都是2000bp大小的条带。因为第一次做酶切反应,所以现在已经完全不知道该怎么办了,希望有经验的人来帮帮我看看是哪里出的问题,非常感谢!  非常抱歉内容写的有点多
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linglingys

实习版主

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【答案】应助回帖

楼主,我想咨询下你T/A克隆用TAKARA试剂盒,连接反应16°C多久?本人连接30min做,连阳性对照都没有任何菌落。培养基是含Amp、X-gal、IPTG,但我是先做了含Amp平板再涂X-gal、IPTG在表面,不知道是否影响生长?
5楼2015-06-09 09:37:02
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Mis_Q

版主

优秀!!有木有!!!优秀!!有木有!!!优秀!!有木有!!!优秀!!有木有!!!

怎么没有人呢,自己顶一个
2楼2015-04-01 08:17:20
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yesucao

超级版主

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【答案】应助回帖

★ ★ ★ ★ ★
感谢参与,应助指数 +1
Mis_Q: 金币+5 2015-04-02 15:11:48
你的PCR验证应该没有什么问题,问题的关键是酶切。
建议:酶切体系为20ul,两种酶各1ul,质粒1-2ul,37度水浴2h,跑电泳检测就ok了。
你的目的是验证插入条带,没必要过夜酶切。
3楼2015-04-01 10:00:45
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Mis_Q

主管区长

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引用回帖:
3楼: Originally posted by yesucao at 2015-04-01 10:00:45
你的PCR验证应该没有什么问题,问题的关键是酶切。
建议:酶切体系为20ul,两种酶各1ul,质粒1-2ul,37度水浴2h,跑电泳检测就ok了。
你的目的是验证插入条带,没必要过夜酶切。

今天跟技术咨询了一下,怀疑是我没有把目的片段连接上去(因为测序也不出结果),出现的PCR产物为假阳性,我也是凌乱了。
下一步准备把空载体和我提出来的质粒同时做酶切验证,并且对PCR产物也做酶切验证,因为怀疑酶切位点的设计是不是有问题,比如目的序列或者载体上的相似序列会产生非特异性酶切。
另外准备对PCR产物进行测序,看看到底是不是假阳性。
对于酶切体系我没有改过,一直是按照NEB提供的体系来做的。
4楼2015-04-02 15:10:57
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