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pET28a双酶切后连接目的基因,什么也不长。。。
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gyesang: 回帖置顶 2013-04-28 17:32:56
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我的连接做出来了,在此分享下,希望能帮到遇到同样问题的同学 1.我的质粒提出来大小不对,可能就是构想不同的原因,虽然我前几次提的都是这么大,但有一次我提出来的质粒大小事对的,在5,6k左右。但之前分子量大的质粒不影响后续试验 2.我之前一直连接不上市因为我的片段浓度都太小了,双酶切完跑胶时条带也不是很亮,回收损失一部分就更少了,后来加大上样量,DNA片段浓度提高了,就连上了,虽然就长了两个菌落,但都是阳性的,呵呵,目前不知道为啥连接效率这么低,空质粒转感受态的效率很高,所以应该不会是感受态的问题。希望大侠们帮我分析下原因,接下来还要连第二个基因,不想连接效率还是这么低啊 无论怎样,只要连上就好 |
16楼2013-03-07 15:57:07
cicelyzh
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你做了很多对照,但是转化最关键的是需要做一个阳性对照和阴性对照。你把感受态什么都不转,涂的是无抗性的板子吧,否则不能长得很好。这个并不能说明感受态没问题,只能说明感受态细胞复苏得不错。是否具备感受性需要用感受态细胞转一个抗性相同的质粒,能转进去才说明感受态好用,这是我提到的阳性对照。阴性对照应该是感受态什么都不转涂抗性板,说明感受态细胞没有污染,抗性平板筛选压力足够。 我有些不明白你说的质粒自连是什么。质粒肯定可以转进去的,即使加了连接酶什么的,并不影响后面的转化。做这个对照的意义是什么呢? 对于线性载体,有人做这个对照,一般是把双酶切的线性载体自连后转化。如果出现很多克隆,说明酶切不完全。 |
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3楼2013-03-02 13:20:24
cicelyzh
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4楼2013-03-02 13:22:25
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我建议你对DNA进行定量。 一般来说,设计一个连接反应,载体量最少需要50-100ng,而外源片段的分子数是载体分子数的3-10倍(具体质量取决于你的载体或外源片段的大小,你可以自己换算)。连接体系为10ul,转化时用一半(5ul)转化50ul感受态细胞(最好用购买的感受态细胞,感受态的效率有保证),留下另一半备用。 最好设置各种对照,以方便分析失败的原因,包括空载体连接对照等。 |
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9楼2013-03-02 22:47:57
cicelyzh
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如果是自己制备的感受态,每次新做一批都要验证一下活性的。此外,酶切及回收的片段做连接最好定量,这样可以保证反应的效率。 通过看你的一系列对照,我觉得你最好看看是不是T4连接酶的问题,试试把载体做单酶切的片段自连后转化,应该有很多克隆才对。 关于质粒的构象,当然超螺旋是最好的,一般用盒子提的话主要是这种构象的。开环的也不是不行,就是分子的一条链上有缺口,你双酶切出来的片段应该可以用的。如果你每次提都是这样的情况确实有些问题。你用盒子提其它质粒的时候有同样的问题吗? |
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10楼2013-03-03 01:15:27
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14楼2013-03-03 18:57:38
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