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zhoubin0823

木虫 (小有名气)

[求助] 纠结的分子实验,双酶切连不上,求助

我用的表达载体是pMAL-c5X,选的酶切位点是NdeⅠ与NotⅠ,T载体用的是pMD19-T,目的基因片段2200左右,T载体与目的基因连上了,测序正确,分别将表达载体与连上目的基因的T载体双酶切后,分别按载体:目的基因为1:7、2:6的比例连接,就是没有长菌,怎么回事?求高手解答。期间做过一些对照试验:
1:用未酶切的质粒pMAL-c5X转化感受态可以得到大量单菌落,以此排除感受态问题。
2:分别用连接酶连接双酶切的pMAL-c5x与连接目的基因的T载体,结果显示不长单菌落,以此排除酶切不充分。
3:实验室的连接酶其他同学成功连接过,也可以排除连接酶的问题。
那么是因为目的基因片段太大,难以连接吗?求解答!!!
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六月青予

银虫 (正式写手)

【答案】应助回帖

2200bp不是很常,可以把insert的pcr产物跑胶,看是否有非特异性条带,另外,可以尝试其他感受态细菌,菌种对不一样的质粒转化效率是不同的
至少做到没有遗憾
5楼2013-06-11 21:52:30
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zhoulubin

银虫 (小有名气)

【答案】应助回帖


感谢参与,应助指数 +1
zhoubin0823(myprayer代发): 金币+1, Send one rose fragrance in hand, thank you loosen one's purse strings generously, look forward to your wonderful 2013-06-09 08:48:36
一、2.2kb的片段应该不大,不知道pMAL-c5X载体多大,这个载体好像不是很常见呐。
二、”分别将表达载体与连上目的基因的T载体双酶切后,分别按载体:目的基因为1:7、2:6的比例连接,就是没有长菌“,没有载体图,也不知道切下来的片段多大,我想你应该知道根据不同大小去进行胶回收纯化或PCR产物纯化吧。
三、连接的比例1:2~1:5是指摩尔比,要考虑片段大小的,这个建议参考TaKaRa pMD18、19T Vector 说明书中算法。一般做得多的话,都是直接根据电泳条带亮度做相应调整。如果样品浓度低,可以不加水,增大反应体系。
四、一般片段较长,连接时间相应也较长,不同公司的ligase给的参考条件不一样,建议16℃过夜。
五、酶切时间按照说明书来,不是时间越长越好,有些酶长时间incubator会有星活性。
最后,突然发现我们用户名挺像
每个年龄都有其最应该做的事,但只有过了那个年龄自己才知道
2楼2013-06-08 21:53:57
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zhoubin0823

木虫 (小有名气)

引用回帖:
2楼: Originally posted by zhoulubin at 2013-06-08 21:53:57
一、2.2kb的片段应该不大,不知道pMAL-c5X载体多大,这个载体好像不是很常见呐。
二、”分别将表达载体与连上目的基因的T载体双酶切后,分别按载体:目的基因为1:7、2:6的比例连接,就是没有长菌“,没有载体图,也 ...

一、pMAL-c5X载体大小为5700bp,是带有MBP标签的载体。
二、目的基因2200bp,载体5700bp。
三、连接时一般是看酶切后电泳的亮度,纯化后电泳基本上看不到,不太好判断。
四、我也是16°C过夜连接的。
五、我都是过夜酶切,怕切不开,之前就有没切开过的经历。
谢谢你的建议,我会去注意这些,呵呵,用户名挺像可能是我和你的名字差不多吧!
3楼2013-06-11 10:47:51
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linhehu

铜虫 (小有名气)

【答案】应助回帖


感谢参与,应助指数 +1
kx444555: 金币+1, 鼓励交流 2013-06-11 21:12:31
双酶切的话,如果有些酶难切,最好分部酶切,先用难切的酶线性化载体和目的片段,纯化后再进行容易的酶线性化载体和片段。如果载体线性化好的话,那连接几乎是没问题的。而且连接的转化做好把细菌都离心下来,全部涂板。这个是我经常构建载体的经验
在知识的海洋里裸泳
4楼2013-06-11 19:27:02
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