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foodwl银虫 (初入文坛)
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[交流]
关于定量PCR做基因表达量的疑问 已有2人参与
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作为刚开始接触分子生物学的小白来说,实在是有太多的不懂,所用言语存在的不适当之处,还请大家多多批评指正。 表示一直对定量PCR的原理都看的不是太明白,不知道该怎么定一个相同的初始量来比较最终实时定量PCR的结果。 实验想要的是样品在不同贮藏时间中,某些基因得到表达量的变化。请教他人得来的最初方法是在提取总RNA之后,稀释全部样品的RNA浓度到统一的值,然后做反转录之后再将得到的所有样品的cDNA的浓度调整到一致,然后做半定量PCR之后得到合适的引物,就可以做定量PCR了 今天又听说,在半定量PCR的时候还要调整全部样品cDNA的量,使得所有样品在P内参基因后电泳的条带亮度一致,然后再用这个的量来进行定量PCR,这样再调整的话,岂不是之前的量就不一致了么??? 因为本是小白,是在是越来越晕,是有步骤重复了,还是怎样,到底该如何保证定量PCR之前样品量的一致性问题呢? 实时定量的时候还是每个样品都要做一个内参么? 求各位大侠相助,不胜感激 ![]() ![]() |
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半定量是这样操作的,反转录相同的RNA用量(如1ugRNA),用actin引物去扩增每个样本,虽然反转录用的是相同的RNA量,但是actin扩增出来的片段还是会有亮度差异的问题,这时就得根据不同的亮度调整每个模板的用量,待actin扩增的片段亮度调成大体一致后,每个模板的用量也会不尽相同,然后用基因的引物在每个模板里扩增,每个模板的用量和调好actin的模板用量一致,这样就会得到基因的表达量的差异。 定量PCR可以不调模板浓度,因为每个模板都要做内参,通过计算每个模板的内参来计算每个模板基因的表达量。 |
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