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shuiniu87987

银虫 (小有名气)

[求助] Takara的BamHI和XhoI双酶切求助 已有2人参与

最近酶切连接转化后一直没菌落,请大家看看问题出在哪? 50微升双酶切体系:通用buffer 是10乘K buffer 5微升,BamHI和XhoI各加2.5微升,质粒2微克,加水至50微升。然后37度2小时,30度两小时,结束。请问大家Buffer是不是加少了,还是Takara的酶效率不高,需要延长酶切时间?酶切跑电泳条带后的质粒和目的片段条带均清晰。连接用的Takara的T4连接酶,16度连接10h,25微升体系,摩尔比是1:6,说明书要求分别是0.3pmol和0.03pmol,转化为质量大概是200ng(目的片段)和100ng(质粒),我只加了80ng(目的片段)和50ng(质粒),请问这会影响吗?培养基和感受态均做过对照,没问题。谢谢回答。
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youlinglyw

荣誉版主 (著名写手)

一匡天下

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【答案】应助回帖

★ ★ ★ ★ ★ ★ ★
感谢参与,应助指数 +1
shuiniu87987: 金币+5, 有帮助 2014-05-09 08:42:55
gyesang: 金币+2, 鼓励回帖交流! 2014-05-31 16:28:38
一般情况下,我酶切都在四五个小时以上
如果是为了克隆,我一般酶切过夜,这样酶切彻底

你可以试一下一种t buffer,那个是克隆神器

另外你说的这种情况,我很怀疑是感受态问题,用商业化的感受态试一下,几块钱一支
天行健
2楼2014-05-08 22:52:56
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junnavme2014

金虫 (正式写手)

【答案】应助回帖

★ ★ ★ ★ ★ ★ ★
感谢参与,应助指数 +1
shuiniu87987: 金币+5, 有帮助 2014-05-09 08:46:07
gyesang: 金币+2, 鼓励回帖交流! 2014-05-31 16:28:44
连接用的Takara的T4连接酶,16度连接10h,25微升体系,摩尔比是1:6,说明书要求分别是0.3pmol和0.03pmol,转化为质量大概是200ng(目的片段)和100ng(质粒),我只加了80ng(目的片段)和50ng(质粒),请问这会影响吗?

为什么不用Takara出的连接试剂盒呢,就比单买连接酶贵50块吧,但效果是完全不一样的。
3楼2014-05-08 23:20:26
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shuiniu87987

银虫 (小有名气)

引用回帖:
2楼: Originally posted by youlinglyw at 2014-05-08 22:52:56
一般情况下,我酶切都在四五个小时以上
如果是为了克隆,我一般酶切过夜,这样酶切彻底

你可以试一下一种t buffer,那个是克隆神器

另外你说的这种情况,我很怀疑是感受态问题,用商业化的感受态试一下,几块 ...

我是做表达载体,我的感受态BL21做过空质粒对照,Pet32a转化后,菌斑长得很好。
4楼2014-05-09 08:44:59
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youlinglyw

荣誉版主 (著名写手)

一匡天下

优秀版主

引用回帖:
4楼: Originally posted by shuiniu87987 at 2014-05-09 08:44:59
我是做表达载体,我的感受态BL21做过空质粒对照,Pet32a转化后,菌斑长得很好。...

如果是做表达的话,有时候就比较麻烦。你可以试一下Rosetta菌
天行健
5楼2014-05-09 09:07:48
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梦想很重要2

新虫 (初入文坛)

本帖内容被屏蔽

6楼2014-05-10 18:11:23
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shuiniu87987

银虫 (小有名气)

引用回帖:
6楼: Originally posted by 梦想很重要2 at 2014-05-10 18:11:23
Takara的东西不好,建议用NEB的

嗯 再试一次 不行就换
7楼2014-05-10 19:47:23
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