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山水88

木虫 (正式写手)

[求助] Red重组老是不成功,求救

用Red重组敲除基因,做了一个多月了,还是没有成功,前期是抗性基因片段PCR量低,后来换了酶解决了,转了pKD46之后的菌株诱导表达到OD0.6制备感受态转化PCR片段,过程应该都是比较常规的了,可是这么久就是不成功,请问有做过的指点一下,谢谢了,浪费不起时间了
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Haibara_Ai

铜虫 (小有名气)

【答案】应助回帖

★ ★ ★ ★ ★ ★ ★ ★ ★ ★ ★ ★ ★ ★ ★ ★ ★ ★ ★ ★ ★ ★ ★ ★ ★ ★ ★ ★ ★ ★ ★ ★ ★ ★ ★ ★
感谢参与,应助指数 +1
山水88: 金币+20 2013-11-03 17:43:17
myprayer: 金币+1, 赠人玫瑰,手有余香。分子生物期待你更多精彩 。从根本去入手 2013-11-04 08:35:42
山水88: 金币+15, 终于成功了,谢谢您的帮助! 2013-12-09 21:50:22
反正我最开始用tet做过  后来觉得问题太多(你假的菌落是不是比正常的小? BW25113长的很快的,菌落比dh5alpha也大很多)
直接换其他抗性了,Kan clora spec都不会长假的,就是clora可能选择压力略大,不过长出来的都是一定有抗性的,另外重组质粒用psim19效率比pkd46高差不多一个数量级(pBad其实是个比较烂的诱导promoter)。
Ara0.2%差不多是10mM还多了,06年有文章说这个略微有点高(其实高浓度的Ara对E coli有点毒性),不过这个和诱导时间有关,我是OD=0.1诱导后1hr的。
7楼2013-11-02 02:13:19
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oaixlittle

金虫 (初入文坛)

【答案】应助回帖

★ ★ ★ ★ ★ ★
感谢参与,应助指数 +1
山水88: 金币+5 2013-11-03 17:43:41
myprayer: 金币+1, 赠人玫瑰,手有余香。分子生物期待更详细的解答 2013-11-04 08:35:56
以前我们做这个转化效率不高,就是增加感受态和PCR片段的量,50ml菌体做一管感受态,PCR产物50或100ul沉淀到5ul直接全部转掉
假阳性多可能是你PCR的模板没弄好,一定不能有质粒混在里面。我们用的是pIJ773,一定要确保完全酶切,片段电泳后胶回收,处理成线性片段再去做模板
13楼2013-11-02 15:25:13
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Haibara_Ai

铜虫 (小有名气)

上面同样重组说的是用本身RecA之类的重组吧,那个要求比red系统高不少。

另外lz你目标菌里面既然P不出tetR,那么只能是抗性失效/污染/奇怪的抗性。 反正我觉得既然有不带抗性的假阳性,最好就是换一种抗性。
16楼2013-11-02 22:53:02
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guohuayin

木虫 (著名写手)

博士,副教授

【答案】应助回帖

★ ★ ★ ★ ★ ★ ★ ★ ★ ★
山水88: 金币+10 2013-11-03 17:44:04
引用回帖:
6楼: Originally posted by 山水88 at 2013-11-01 04:05:54
1、将PKD46化转到大肠杆菌中,挑取单克隆,提取质粒,初步验证后,接种至AMP培养基中30度过夜培养,次日1:50转接至新鲜培养基,培养至OD600=0.2时加入阿拉伯糖至终浓度0.2%,继续培养到OD0.6时,制备电转感受态细胞 ...

这是我能想到的解决办法:我看你做的实验,不应该是抗生素失效的问题,不过四环素抗性确实不好用,你可以给朱老师索要其他抗性质粒做个对照试试,也许就做出来了。同时我建议你检查所用的所有的实验材料,重组质粒,包括菌株是否正确,我做重组时,都是一个一个材料核实,确保重组系统没有问题,有些问题是当时我自己都没有料想到的,觉得不应该出现的问题,但是就是出错了,(比如曾经碰到重组质粒出错,抗生素失效,而这些都是问题的关键)。总之,重组碰到的问题太多,细心才能解决所有的问题。
内生菌资源和核酸分子的利用
18楼2013-11-03 01:02:17
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Haibara_Ai

铜虫 (小有名气)

你重组质粒是哪个(哪篇文献)?重组酶的启动子是什么?   red系统是对细胞有毒的,你至少应该等OD到0.1再开始诱导(如果是PL系的启动子,诱导20min左右就可以了),另外2mMIPTG已经对细胞有些毒性了,SOB我没用过,但是葡萄糖对整个细胞代谢(蛋白质合成)是有影响的,另外OD=0.6有点偏高,0.4左右比较好

另外最后一步我没试过30°带原始质粒过夜,不过我觉得这样总是给细胞增加压力。
27楼2013-11-19 10:12:10
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山水88

木虫 (正式写手)

引用回帖:
30楼: Originally posted by Haibara_Ai at 2013-11-19 11:40:07
wtLAC promoter得话全程用LB培养基,Plac是Crp激活,LacI抑制,Crp是受cAMP(葡萄糖抑制)调控
另外用Plac是没什么道理的,这个promoter不是个很好地promoter(乱起八糟调控太多,strength和leaky都不明,我觉得相 ...

恩,那我可以尝试下pKD46了,看看效果如何
31楼2013-11-19 15:36:22
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普通回帖

guohuayin

木虫 (著名写手)

博士,副教授

【答案】应助回帖

★
感谢参与,应助指数 +1
myprayer: 金币+1, 赠人玫瑰,手有余香。分子生物期待你更多精彩 2013-11-04 08:36:13
http://muchong.com/bbs/viewthread.php?tid=6366582
我做过Red重组敲除大肠杆菌基因,上面是我发的帖子,混总了一下相关问题,你可以参考一下,如果有问题,欢迎交流。
内生菌资源和核酸分子的利用
2楼2013-11-01 20:29:45
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山水88

木虫 (正式写手)

引用回帖:
2楼: Originally posted by guohuayin at 2013-11-01 20:29:45
http://muchong.com/bbs/viewthread.php?tid=6366582
我做过Red重组敲除大肠杆菌基因,上面是我发的帖子,混总了一下相关问题,你可以参考一下,如果有问题,欢迎交流。

你好,看过您的帖子了,对您的工作表示惊喜。我目前的情况是抗性基因PCR片段量应该够了,感受态也是按照文献方法做的,菌株就是常用的BW25113,引物设计50+20bp,转化后在抗性平板上长的挺多的,但全是假阳性,因此想请教一下有什么需要注意或者可能会影响重组效率的步骤,谢谢!
3楼2013-11-01 21:09:04
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山水88

木虫 (正式写手)

引用回帖:
2楼: Originally posted by guohuayin at 2013-11-01 20:29:45
http://muchong.com/bbs/viewthread.php?tid=6366582
我做过Red重组敲除大肠杆菌基因,上面是我发的帖子,混总了一下相关问题,你可以参考一下,如果有问题,欢迎交流。

还有一个就是,我想敲除的是三个串联基因,大小在2.5kb,应该说也不是很大了,不知道这个会有影响么。另外一个就是我使用的是四环素抗性基因片段,以前这个抗生素也没用过,所以对它的使用注意事项也不是很清楚,如果是抗性失效的话,长出假阳性也就可以理解了,但同时我做DH5a对照是没有菌落长出来的,因此重组效率不高应该是主要问题了,当然,四环素使用注意事项也烦请老师指点一二,谢谢!
4楼2013-11-01 21:17:33
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Haibara_Ai

铜虫 (小有名气)

tet要避光',你实验步骤至少要写清楚吧,不然问题多了

[ 发自手机版 http://muchong.com/3g ]
5楼2013-11-01 22:45:42
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山水88

木虫 (正式写手)

引用回帖:
5楼: Originally posted by Haibara_Ai at 2013-11-01 22:45:42
tet要避光',你实验步骤至少要写清楚吧,不然问题多了

1、将PKD46化转到大肠杆菌中,挑取单克隆,提取质粒,初步验证后,接种至AMP培养基中30度过夜培养,次日1:50转接至新鲜培养基,培养至OD600=0.2时加入阿拉伯糖至终浓度0.2%,继续培养到OD0.6时,制备电转感受态细胞,10%甘油洗涤。
2、将打靶分子(Tet抗性)>100ng左右(同源臂50bp),2500V电转至感受态中,30度培养2h后,涂布于Tet抗性的LB平板,37度过夜培养。

你说的Tet避光才开始我不知道,但是同时做了DH5a的对照没有长出菌落,因此抗性是存在的或者说操作对其影响不是很大。然后PCR完后没有经过DpnI处理而是跑胶回收的,在长出的菌落里提质粒没有发现模板质粒的存在,因此这步也应该不是问题吧。导入的抗性基因片段之前是PCR量太少,后面换了酶回收以后取0.5ul就能够达到和Marker差不多的量度了,而且这样我还是大量回收然后共沉之后电转的。我能想到的就是这些了,谢谢!
6楼2013-11-02 00:05:54
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Haibara_Ai

铜虫 (小有名气)

另外看抗性失效或者有没有质粒污染,你应该做一组不诱导+DNA电转。
8楼2013-11-02 04:03:48
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山水88

木虫 (正式写手)

引用回帖:
7楼: Originally posted by Haibara_Ai at 2013-11-02 02:13:19
反正我最开始用tet做过  后来觉得问题太多(你假的菌落是不是比正常的小? BW25113长的很快的,菌落比dh5alpha也大很多)
直接换其他抗性了,Kan clora spec都不会长假的,就是clora可能选择压力略大,不过长出来的 ...

我也觉着tet抗性问题好多,好像环境中抗tet的菌也挺多的,当时这个抗性选择失误了,但是现在不是尽量用这个做成功吧,要不不好跟老板交代了。挑选菌落我是大的小的都挑了,而且挑的应该很多了吧,要么就是运气实在不佳,全是假阳性了。空白对照我做DH5a看抗性,还有未电转的感受态涂板也是没有菌落的,实在是想不明白哪里出问题了。
9楼2013-11-02 11:52:55
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Haibara_Ai

铜虫 (小有名气)

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myprayer: 金币+1, 赠人玫瑰,手有余香。分子生物期待你更多精彩 。 2013-11-04 08:36:28
你要做电转+不诱导,这样才能保证没有质粒污染。
还有一点,你目标基因是啥。。  不是housekeeping或者有很高选择压力的吧。。   另外你确定假阳性方法是什么?  目标菌里面能不能P出TetR
10楼2013-11-02 14:28:36
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