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apple319
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2013-08-06 10:35:35
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huanghznd
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4楼
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apple319
at 2013-08-06 14:04:26
太谢谢了啊,是用的TAKALA的酶,SmaI和SpeI的反应温度一个是30度,一个是37度,可以使用双酶切吗?而且SpeI用那个缓冲液条件加括号了是什么易受star活性影响,请问是什么意思啊?...
星号活性:SpeI在低离子强度条件下,识别序列会发生变化。
SmaI在37度反应也表现出相同的酶活性,但同30度相比,稳定性稍差。
TAKALA书上都有的。
双酶切之后回收片段浓一点,再酶连应该没有什么问题的
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6楼
2013-08-06 14:36:31
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wangweida2
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现在好多公司都有通用Buffer的,不同的酶在同一Buffer里都有较高的活性,而且反应条件相同。使用起来很是方便。我用的是Fermentas的酶,你可以参考下。
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2楼
2013-08-06 10:43:43
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huanghznd
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建议使用TAKALA的酶,SmaI和SpeI双酶切,用反应体系终浓度1XT buffer+BSA
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3楼
2013-08-06 12:21:56
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apple319
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apple319
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7楼
2013-08-06 14:47:38
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joan198108
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既然最适温度不同只能分布切,可以用fermentas或者TaKaRa的fastdigest(Quickcut)采用通用buffer,逐次添加不同酶,分别切割,最后一块回收。希望对你有帮助。
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8楼
2013-08-06 15:11:53
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huanghznd
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7楼
:
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apple319
at 2013-08-06 14:47:38
啊!!!太感谢了,因为最近反复做这个,都让自己灰心了,那意思是直接37度进行双酶切就行了?嗯,还有就是麻烦问一下,SpeI识别序列发生变化但是对于我们酶切加连接会没有影响吗?请问您也用过这两个酶切位点吗?...
SpeI识别序列发生变化之后,它切的位点就不知道是哪里了喔,但对整体而言也是有影响的,但对于你做酶连,只要有正确切割的位点,应该也是很容易连上去的。
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9楼
2013-08-06 15:37:40
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bullfrog325
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试试把SmaI换成XmaI, 它们辨认同样的序列, 前者切出的是平端后者是粘端, 连接的时候后者效率更好.
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10楼
2013-08-06 16:00:40
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