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revivor

银虫 (小有名气)

[求助] 提取的RNA 浓度低还能做电泳检测质量吗?

最近提取体外诱导的软骨组织标本的RNA时,发现浓度很低,才5ng/ul 左右。想做电泳检测RNA质量,但查了资料好像点样没有固定的标准,但似乎一般要求RNA的点样量都要在1ug(或以上),照这样我提取的RNA没法做电泳了(要加200ul RNA)。可我几次提得浓度最高的RNA样本也就197ng/ul... 本想如果电泳检测RNA没降解的话,就准备做逆转录PCR 来检测某种基因,现在卡壳进行不下去了。晕,求教高手,还有没有什么办法?
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revivor

银虫 (小有名气)

引用回帖:
2楼: Originally posted by 凌波丽 at 2013-04-21 17:14:44
RNA浓度低,就纯化浓缩一下吧。
步骤如下(不唯一,仅供参考)
RNA样品用相同体积的酚/氯仿(酚和氯仿各50%体积,浓度参照RNAzol试剂盒)装入一有盖离心管离心10000rpm室温15s,水相移入另一离心管,重复以上操作 ...

我按照试剂盒的说明书提RNA ,最后都是收集100ul 的RNA 溶液。而如果按照5ng/ul的浓度,总量也就0.5ug。就是浓缩了也还是0.5ug,似乎根本达不到电泳的上样量的标准啊,这怎么办?
4楼2013-04-21 20:06:11
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凌波丽

专家顾问 (知名作家)

【答案】应助回帖

★ ★ ★ ★
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小丹木木: 金币+4, 丽美眉,打个招呼哈 2013-04-21 18:20:18
amisking: 回帖置顶 2013-04-21 19:45:51
RNA浓度低,就纯化浓缩一下吧。
步骤如下(不唯一,仅供参考)
RNA样品用相同体积的酚/氯仿(酚和氯仿各50%体积,浓度参照RNAzol试剂盒)装入一有盖离心管离心10000rpm室温15s,水相移入另一离心管,重复以上操作直到两相间没有蛋白质沉淀为止,这样蛋白质基本上就去掉了。之后可以用核酸沉淀法回收核酸,2-4度,10000rpm离心15min,取上清液。上清液中加入等量异丙醇,颠倒数次,室温静置约10min。再2-4度,10000rpm离心10min,弃上清液。用70%乙醇洗涤RNA沉淀,静置约1min。又2-4度,8500rpm离心5min,弃上清液。然后装入Ep管,离心真空抽干数分钟。最后少量用DEPC处理过的双蒸馏水溶解后测电泳,大多数低温保存。
2楼2013-04-21 17:14:44
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aqp2

新虫 (初入文坛)

我的和你的一样,rt完了,p不出来。做不下去了?求高手指点啊/
3楼2013-04-21 18:53:47
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