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lmcyjxs

金虫 (正式写手)

[交流] RNA提取及电泳问题(附图),虫友们能否帮我分析下啊~~已有3人参与

虽然我实在不敢拿出来见人了,但极其希望大家能一起帮我看看,我这边实验室很少能找到类似方向的人讨论交流啊~~~~~o(>_<o ~~

如图,第一,虽然能跑出条带来,看似也没有降解,但跑的电泳图出现花白的一片,不知道是不是胶制的不好(我在制胶时,胶跟托板粘得不牢,有移动过,TAE放了1个月左右),或是有蛋白杂质污染。
另外就是我跑的电泳图(此时的TAE是新配的了)出现一条弯曲的条带(看第二个图),在暗处就能看到。连DNA marker 也没跑出来,不知道是什么问题。

我用异硫氰酸胍-SDS法提取植物茎RNA,所用的试剂全是自己配的;

至于去蛋白那一步,我用水饱和酚:氯仿:异戊醇(25:24:1)去了一次,再用氯仿去1次,一般用水饱和酚:氯仿:异戊醇(25:24:1)去了一次后,再用氯仿去(此步我没有用力震荡,只是稍微振荡再涡旋10来秒),肉眼看两相分层处几乎没有白色蛋白了。

另外我提取的RNA保存-80℃的75%酒精中,这样会有问题吗?关于RNA的保存网上有很很多说法,搞得我不知道该怎么做,虽然可以反转录成cDNA ,但是我引物还没弄好,可以先反转录成cDNA,扩增那块春节后再做吗?如果反转录成cDNA,可以用什么办法检测一下cDNA的质量吗?虫友们能否介绍下保存RNA的方法?

注:
我的电泳缓冲液是自配的1XTAE液(直接按比例配成20mL的50XTAE液,再稀释成1XTAE液的)
10X10cm规格的胶,电流电压100mA、100V
采用点染法,1%左右的琼脂糖胶,DNAmarker 我稀释了40倍,取5uL与2uL稀释100倍的sybr Green I
混匀,及加1ul的6Xloding buffer上样液跑的。也不知道这样操作有没有问题。

我都想崩溃了,我也不知道哪里出了问题~~望各位虫友多指教啊~~

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思路决定出路。。。
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cicelyzh

铁杆木虫 (职业作家)

★ ★ ★ ★ ★
小木虫: 金币+0.5, 给个红包,谢谢回帖
amisking: 回帖置顶 2013-01-20 18:16:05
amisking: 金币+4, MolEPI+1, 感谢应助! 2013-01-20 18:16:16
没有见过你的胶的情况。DNA marker稀释40倍是不是倍数多了些?加染料一般要放置几分钟让染料与DNA充分结合。
至于胶从托板滑脱的话,一般就是放回去就可以了。托板只是起到电泳时固定胶的作用。
你可以把RNA先反转录成cDNA保存。cDNA比RNA稳定性要好一些。注意把DNA消化好再做反转录。反转录后的cDNA质量是无法检测的。因为反应体系里既有合成出的cDNA也有RNA。而且合成出来的cDNA丰度和分子量不均一。虽然说可以把RNA消化掉,但是一般大家都不这样去做。因为RNA是不影响下面的PCR定量的。
2楼2013-01-20 10:39:17
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lmcyjxs

金虫 (正式写手)

引用回帖:
14楼: Originally posted by cicelyzh at 2013-04-01 23:26:44
marker不清晰的原因可能是胶配制不均匀或者是电泳条件控制不好。你跑电泳大致多长时间,电压多少?...

你好!我知道我的电泳图为什么是这样的了,我来解释一下,同时也希望可以对一些像我这样的新手避免发生这样的问题:
第一张电泳图RNA提取的很好,但是拍照的时候漏光了,胶在白光下泛白,当我关了灯后,图像会很清晰。
第二张电泳图是胶没配好,太干了或还没干时拔梳子时,使胶在梳子边缘不同程度的损伤,以前不知道该凝多久没一个度,同学之间的说法并没到重点,其实胶凝不能太干,但半个小时还是应该的,半个 小时后看胶的表面,如果自己能看到水分缺失的样子,那么肯定太干了,肯定会容易损伤凝胶。
marker 不清晰,第一上样量是否够(之前没买过marker,后来才知道marker一般不用稀释了,使用说明看说明书就好),第二核酸染料是否够或没有问题,第三电泳液是否缓冲能力差了,第四上样时是否损伤了凝胶或漂浮,第五:胶浓度不均匀(此时容易跑歪)

另外,RNA我是100v 100mA跑15min,虽然我知道DNA Marker跑不开,但证明我的胶没事,染色清晰就好了。
思路决定出路。。。
15楼2013-04-06 09:48:39
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普通回帖

lmcyjxs

金虫 (正式写手)

引用回帖:
2楼: Originally posted by cicelyzh at 2013-01-20 10:39:17
没有见过你的胶的情况。DNA marker稀释40倍是不是倍数多了些?加染料一般要放置几分钟让染料与DNA充分结合。
至于胶从托板滑脱的话,一般就是放回去就可以了。托板只是起到电泳时固定胶的作用。
你可以把RNA先反转 ...

谢谢,那消化DNA一般是买DNA消化酶吗?
还有我怀疑自己的是蛋白质或有机物污染太严重,可不可以把RNA沉淀溶解了再重复去蛋白步骤?
思路决定出路。。。
3楼2013-01-20 12:13:01
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lmcyjxs

金虫 (正式写手)

引用回帖:
2楼: Originally posted by cicelyzh at 2013-01-20 10:39:17
没有见过你的胶的情况。DNA marker稀释40倍是不是倍数多了些?加染料一般要放置几分钟让染料与DNA充分结合。
至于胶从托板滑脱的话,一般就是放回去就可以了。托板只是起到电泳时固定胶的作用。
你可以把RNA先反转 ...

还有就是一般DNAmarker 稀释几倍来上样啊?我第一次用DNA marker,也没有经验,多多请教啊~~
思路决定出路。。。
4楼2013-01-20 12:14:29
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cicelyzh

铁杆木虫 (职业作家)


小木虫: 金币+0.5, 给个红包,谢谢回帖
引用回帖:
3楼: Originally posted by lmcyjxs at 2013-01-20 12:13:01
谢谢,那消化DNA一般是买DNA消化酶吗?
还有我怀疑自己的是蛋白质或有机物污染太严重,可不可以把RNA沉淀溶解了再重复去蛋白步骤?...

消化DNA是买DNase,按照说明使用就可以了。如果怀疑有蛋白或者有机物污染,测A260/280和A260/230,如果比值太低的话可以再次抽提蛋白。此外,点染的灵敏度虽然高,但我还是比较喜欢胶染或者泡染,比较均一,分子量估测也更准确。
5楼2013-01-20 12:45:29
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cicelyzh

铁杆木虫 (职业作家)

引用回帖:
4楼: Originally posted by lmcyjxs at 2013-01-20 12:14:29
还有就是一般DNAmarker 稀释几倍来上样啊?我第一次用DNA marker,也没有经验,多多请教啊~~...

marker用量按照产品说明就可以了。因为你的胶上marker没有出来,所以我问一下。
6楼2013-01-20 12:46:42
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lmcyjxs

金虫 (正式写手)

引用回帖:
5楼: Originally posted by cicelyzh at 2013-01-20 12:45:29
消化DNA是买DNase,按照说明使用就可以了。如果怀疑有蛋白或者有机物污染,测A260/280和A260/230,如果比值太低的话可以再次抽提蛋白。此外,点染的灵敏度虽然高,但我还是比较喜欢胶染或者泡染,比较均一,分子量 ...

真的非常感谢!我想再次抽提蛋白,可以直接加氯仿抽提再沉淀不?
思路决定出路。。。
7楼2013-01-20 15:27:46
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xudabin98

木虫 (正式写手)


小木虫: 金币+0.5, 给个红包,谢谢回帖
建议你看看这两篇文献 http://muchong.com/bbs/viewthread.php?tid=5191776
8楼2013-01-20 19:03:45
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lmcyjxs

金虫 (正式写手)

引用回帖:
8楼: Originally posted by xudabin98 at 2013-01-20 19:03:45
建议你看看这两篇文献 http://muchong.com/bbs/viewthread.php?tid=5191776

真诚地表示感谢!
思路决定出路。。。
9楼2013-01-20 19:28:00
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cicelyzh

铁杆木虫 (职业作家)


小木虫: 金币+0.5, 给个红包,谢谢回帖
引用回帖:
7楼: Originally posted by lmcyjxs at 2013-01-20 15:27:46
真的非常感谢!我想再次抽提蛋白,可以直接加氯仿抽提再沉淀不?...

氯仿是抽提酚及帮助分相的,去蛋白最好用酚氯仿,抽提前一般要稀释一下样品,否则体积太小样品的损失很大,抽提完再次沉淀就可以了。
10楼2013-01-21 05:08:49
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