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hedyzero

铁虫 (初入文坛)

[求助] 连接转化假阳性提不出来质粒吗?

我做连接转化两个月了,还没出结果,心情相当之郁闷!请教大家几个问题:

1、100ul大体系酶切,酶加2ul够吗?我没有直接这样加过,一直是按照20ul的体系,质粒10ul,酶各1ul,10×buffer 2ul,补水到20ul。然后按这个比例扩大5倍,即100ul体系,酶切3h。但是还是酶切不完全,会出现三条带,再胶回收目的片段后浓度更低了,通常只有10ng/ul左右。

2、我的载体两个酶切位点之间只有6个碱基,用的是宝生物的Kpn 1和Xba 1,同时进行双酶切。两个酶都做过单酶切对照,都能完全切成线性载体。所以我就直接拿双酶切载体进行连接了。

3、连接采用的10ul体系:目的片段1755bp,载体2548bp,按照3:1的比例加,宝生物T4连接酶1ul,buffer 1ul。连接后取5ul电转50ul感受态。结果5个板子只有一个长菌了。挑了80多个样PCR全部阴性。但是菌落变黄显示的是阳性结果,看来全是假阳性了。由于菌株时阳性菌,我怕PCR前面预热时间短没有把细菌壁破掉,所以又重新提质粒检测了下,结果质粒也没有。如果是假阳性,载体没有切完全,或者是载体发生自连了,那质粒应该能提出来吧?

4、对照组,我直接转的空质粒,提质粒后发现是正确的。直接转的连接产物,就全是假阳性,也提不出来质粒。

5、T4连接酶用时是在冰上操作,T4 buffer用分装吗?每次都必须在冰上融化完全才能加?

6、连接时能直接用T载体中的solution I 吗?

实验室没人做过这些,所以很是苦恼,希望大家给予帮助,先感谢!
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cicelyzh

铁杆木虫 (职业作家)

【答案】应助回帖

★ ★ ★ ★ ★ ★ ★ ★
感谢参与,应助指数 +1
kx444555: 金币+3, 鼓励交流 2013-06-25 10:33:36
hedyzero: 金币+5, ★★★很有帮助 2013-06-25 11:44:58
1949stone: MolEPI+1, good 2013-06-25 12:30:21
酶切效果是与底物的量(质粒的μg数)及酶的活力(U)有关的,不能只考虑质粒体积建立酶切体系。你先把提好的质粒定量后做酶切,可以用小体积电泳检测酶切效果。一般是确认酶切完全后再做胶回收的。
如果提不出来质粒,可能是污染了杂菌或者是筛选抗生素的浓度不够。
两个酶切位点之间相差6个碱基已经不少了,应该不太影响效率,可以完全切开的。酶切后的载体最好也做胶回收。
T4连接酶一般16度过夜比较好。buffer一般不分装,当然分装会比较好。buffer需要完全融化后才能使用,一般是在室温下才能完全溶解的。融化后放在冰上操作。
连接时可以用T载体的solution I。
3楼2013-06-24 23:37:38
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hedyzero

铁虫 (初入文坛)

1949stone: 回帖置顶 2013-06-25 12:30:36
1949stone: 可以放到原帖子里 2013-06-25 12:30:54
引用回帖:
3楼: Originally posted by cicelyzh at 2013-06-24 23:37:38
酶切效果是与底物的量(质粒的μg数)及酶的活力(U)有关的,不能只考虑质粒体积建立酶切体系。你先把提好的质粒定量后做酶切,可以用小体积电泳检测酶切效果。一般是确认酶切完全后再做胶回收的。
如果提不出来质 ...

多谢多谢!!!!

1、一般胶回收目的片段时做的双酶切,肯定是越多回收的片段浓度才会越高。一般都用多大体系双酶切呢?我的质粒一般是50ng/ul左右。。按照宝生物的说明书,20ul体系 1 ul 的酶可以切1ug DNA,那么20ul双酶切体系中我质粒加10ul 不多吧,或者是少?

2、我的菌还有质粒都是食品级的,筛选标记是乳糖,转进去的在乳糖为唯一碳源情况下能生长且菌落变为黄色,没转进去的原则上是不能在乳糖培养基上生长的。我挑的黄色菌落PCR阴性,提质粒也没提出来。如果是能生长的话应该是含有质粒的。

3、有人说T4 buffer中含有ATP,反复冻融会失活。这样子在室温融化以后,用完再放回-20会不会有影响呢?实验室没人做过,也不知道该怎么操作了,纠结的。

4、目的片段跟表达载体连接时,用T4 好还是solution I 好呢?连接的体系最好多大?
5楼2013-06-25 11:54:25
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普通回帖

武穆大成

木虫 (著名写手)

笨蛋

【答案】应助回帖

★ ★
感谢参与,应助指数 +1
kx444555: 金币+2, 鼓励交流 2013-06-25 10:33:20
1,酶切反应:质粒要定量。根据质粒的量加酶,说明书上有使用比例,双酶切后胶回收,。回收的大小要了解。
2,连接:按照mol比,载体和插入片段比为1:10。。建议载体0.03pmol ,插入片段0.3pmol。。16度过夜。
每一步都定量做,成功的概率高

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2楼2013-06-24 21:52:16
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hedyzero

铁虫 (初入文坛)

送红花一朵
引用回帖:
2楼: Originally posted by 武穆大成 at 2013-06-24 21:52:16
1,酶切反应:质粒要定量。根据质粒的量加酶,说明书上有使用比例,双酶切后胶回收,。回收的大小要了解。
2,连接:按照mol比,载体和插入片段比为1:10。。建议载体0.03pmol ,插入片段0.3pmol。。16度过夜。
每 ...

多谢!
4楼2013-06-25 11:43:31
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武穆大成

木虫 (著名写手)

笨蛋

【答案】应助回帖

引用回帖:
4楼: Originally posted by hedyzero at 2013-06-25 11:43:31
多谢!...

不谢,祝好实验顺利
6楼2013-06-25 13:59:35
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cicelyzh

铁杆木虫 (职业作家)

【答案】应助回帖

★ ★
感谢参与,应助指数 +1
gyesang: 金币+2, 鼓励回帖应助! 2013-06-26 12:32:57
引用回帖:
5楼: Originally posted by hedyzero at 2013-06-25 11:54:25
多谢多谢!!!!

1、一般胶回收目的片段时做的双酶切,肯定是越多回收的片段浓度才会越高。一般都用多大体系双酶切呢?我的质粒一般是50ng/ul左右。。按照宝生物的说明书,20ul体系 1 ul 的酶可以切1ug DNA,那 ...

1. 根据你的质粒浓度,的确量不是很多。但存储质粒的缓冲液里有少量EDTA,如果质粒用的体积大了会抑制后面的酶切作用,如果质粒纯度不高,问题就更大了。根据个人经验,一般高拷贝质粒提出来的浓度都有几百ng/μl。

2. 可能与你的筛选培养基有关,我不清楚乳糖筛选是否非常严格。

3. 虽然是这么说,不过我们实验室的buffer是不分装了,N多人都用,也没见有什么问题。如果你怕出问题就分装成小管。

4. 克隆时连接一般很少出问题,T4或者solution I都应该可以的。连接体系一般是10μl或者20μl。
7楼2013-06-26 02:27:26
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hedyzero

铁虫 (初入文坛)

引用回帖:
7楼: Originally posted by cicelyzh at 2013-06-26 02:27:26
1. 根据你的质粒浓度,的确量不是很多。但存储质粒的缓冲液里有少量EDTA,如果质粒用的体积大了会抑制后面的酶切作用,如果质粒纯度不高,问题就更大了。根据个人经验,一般高拷贝质粒提出来的浓度都有几百ng/μl。 ...

我的是T克隆扩增的质粒,感受态时DH5α,质粒是PMD-19,应该也是高拷贝呀,过夜培养将近16个小时以后,取的10ml菌液来提的。用的天根试剂盒。难道试剂盒出问题?

我是要连接表达载体,连接感觉挺难的。你们一般各组分比例怎么加?
8楼2013-06-26 09:29:23
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cicelyzh

铁杆木虫 (职业作家)

【答案】应助回帖

★ ★ ★ ★ ★
hedyzero: 金币+5, ★★★很有帮助 2013-06-26 14:46:36
引用回帖:
8楼: Originally posted by hedyzero at 2013-06-26 09:29:23
我的是T克隆扩增的质粒,感受态时DH5α,质粒是PMD-19,应该也是高拷贝呀,过夜培养将近16个小时以后,取的10ml菌液来提的。用的天根试剂盒。难道试剂盒出问题?

我是要连接表达载体,连接感觉挺难的。你们一般 ...

我觉得你用的菌太多了吧,高拷贝质粒一般用2-3ml菌液提就行了。用盒子提出来的质粒的质和量一般还是有保证的。
连接也没什么难的,控制也不用特别严格。如果前面酶切回收做得好的话这一步不需要怎么担心的。一般就是10Xbuffer 2μl, T4 ligase 1μl, 载体片段50ng, 目的片段按照摩尔比3:1加(很小的片段按照10:1),用水补足体积到20μl。16°C过夜。
9楼2013-06-26 14:07:40
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