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320080920001金虫 (正式写手)
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平末端连接做不出来克隆
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大家好,我最近在做克隆,是把我以前做过的一个基因的点突变后的质粒(pFastbac1-GENE)设计引物(F和R,在R引物上带有PmlI的酶切位点,F和R内侧附近分别有PmlI和KpnI位点,均为单酶切位点),PCR完了后溶液回收Kit回收,浓度大概130ng/ul,70ul elute,之后我用PmlI和KpnI切(此处犯了一个错误,应该只用PmlI切,这样就不用后面切平了),然后跑胶,切胶回收,用的是Qiagen的胶回收试剂盒,浓度大概为30ng/ul,50ul eltue,而且260/230的值不到0.1,很低。然后用Klenow酶(large fragment)切平KpnI的位点,然后溶液回收。我把pEF-GENE用PmlI酶切(在我要替换的片段上下游有两个PmlI酶切位点),跑胶回收vector,浓度是60ng/ul。用CIP酶处理后消除5‘磷酸,防止自连。然后溶液回收。 最后用T4liase把insert和vector连接起来,转化涂板,我试过DH5a和T1,都没有长出来,这个质粒要的很急,最近我也快做完毕业设计回去答辩了,由于最后这个实验不顺利,我都不知道老板会不会要我,虽然我很想留在她的实验室。最近给自己的压力好大啊! P.S.求技术指导,关心酱油之类的回帖不回勿怪哈!我后面有用pEF-GENE为模板做点突变PCR,但是由于片段是9KB左右,很难P出来。还在平行做PCR后用PmlI单酶切,这样就不用连接了,还在想要不要再设计一下引物,就在紧挨片段上下游,再做PCR,这样酶切后就不用胶回收,直接溶液回收了。 |
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4楼2012-04-22 03:50:41
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6楼2012-04-22 12:30:28
huguangdong
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320080920001: 金币+20, ★★★★★最佳答案, 很有经验啊! 2012-04-23 00:23:04
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320080920001: 金币+6, ★有帮助, 谢谢 2012-05-08 00:10:56
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上面的几位我不能说什么但是基本都没说到点上,去磷酸化是必须的,不然自恋的概率非常大,建议这样做: 1 你用PCR产物做,请问是否使用的是高保真酶,如果是的话可以不用平末端酶切,建议使用T4核苷酸激酶加磷酸基,但理论是来说酶切也不是不可以,只是你使用的这个酶所切出来的平末端连接效率可能比较低(和酶有很大关系)。 2 转化涂板用VECTOR自连作对照,看看你去磷酸化的效果,平末端连接最好作对照。 3 什么都没有长说明载体自连都不存在,那么考虑一下是否抗生素出现问题,检查一下实验材料。 4 不知道你的载体是否也是酶切后变成的平末端,如果是这样,建议连接的时候温度放置在22度,并加入适量切你载体的内切酶,可以比较有效的防止自连,在这个温度下连接时间要超过24小时,否则失败的可能性很大。 5 如果T4连接酶不好用,建议使用TAKARA的SOLUTION I溶液,连接效率会高很多。 6 如果有PEG 4000或者PEG 8000可以适量加入,增加平末端连接效率。 |
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10楼2012-04-22 22:25:56
320080920001
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送鲜花一朵silicare: 金币+5, BioEPI+1, 鼓励深入交流 2012-04-24 10:11:26
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1.我是用的easyTaq扩的,不过下次可以尝试用FastPfu,不过T4核苷酸激酶加磷酸基(我们实验室有PNK),你是担心PmlI酶切的片段可能5‘端没有磷酸是吧? 2.我有做vector自连的对照,但目前还没结果,但是就像你第3条说的,什么也没长确实是自连不存在问题,我的板子是amp的,当时配了很多,师兄也在用这一批板子,我可以确认一下有没有问题,但是好像师兄已经做出来了(他自己的实验)。 4.我的vector和insert都是平末端,而且10ul的连接体系,其中加了1ul(63ng/ul)的vector(约9KB),2ul(30ng/ul)的insert(约500bp),16度连接O/N,然后取1ul跑胶,9ul转化,没有出来,上胶图。我担心22度是否会破坏T4 ligase的酶活性,我都是在冰上操作,然后移到PCR仪中16度过夜酶切。不过我可以试试22度超24小时。不知道成功率多大,是否有尝试的必要,话说和老板trouble shooting的时候老板很鄙视的说她以前做的时候做了很多平末端连接,弱爆了的感觉啊,毕竟她发过Cell,只能信了啊。 5.是指不用T4 ligase buffer,改用 T4 ligase+Solution I吗?我找找。 6.PEG8000实验室的同学刚分装好,推荐使用,不过他使用来连linker的,做的是大体系的反应,不知道可不可以用来做常规的连接转化实验,是否会对后面的转化有影响。 ![]() ![]() ![]() |
11楼2012-04-23 00:42:24
huguangdong
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1 酶切一般都会有磷酸基,或许是我多疑,但这个酶的酶切效率有多高建议你查一下。 2 连接最好别用PCR仪,况且平末端连接一般都需要16小时以上(经验之谈),废仪器又感觉时间不够。 3 发CELL的人未必做这些实验,只是她那么想而已,想当然的事情不可当真,只有自己做了才知道。 4 Solution I是BUFFER和连接酶的混合体,是改进了的连接液体,连接时只加这个东西,具体加法参照试剂说明书。 5 还有22度连接要加入内切酶,除非你的骨架载体不是酶切形成的。 6 对转化没有任何影响,不过就个人经验来说,PEG的因素不是最主要的,也可以不加。 |
12楼2012-04-23 01:19:29
AnaSequence
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没叙述清楚,不知道引物F有没有PmeI酶切位点,如果没有,建议还是用高保真酶,免得在其末端引入其他碱基,没得到平末端;载体去磷酸化是必须的。 方案设计不合理,如果下面的改动不影响,试试改一下: 方案1,插入片段不要加PmeI等酶切位点,直接引物磷酸化后高保真酶PCR,连接到PmeI酶切去磷酸化载体,这种情况下,加PmeI才会只切开载体而不是重组质粒,插入片段既然是平末端连接,用的酶又不是常见酶,不如直接高保真PCR得到平末端; 方案2,载体经过PmeI酶切后用聚合酶在末端加T,插入片段用非高保真酶PCR,进行TA克隆。 |
20楼2012-04-24 09:14:18
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8楼2012-04-22 14:31:56
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