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Sac1和Xho1的双酶切连接
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我在做Sac1和Xho1的双酶切连接,分别用这两个酶对表达载体和T载体进行双酶切3h(NEB的酶 ),T载体上我还加了保护碱基,然后分别切胶回收表达载体的大片段和T载体上的目的片段(两个片段都很亮,大小也合适,大片段约16k,目的片段1100bp),大片段浓度是150纳克/微升,小片段是33纳克/微升,然后做连接(连接是用的promega的T4连接酶,16度16小时 22度3小时 4度过夜都试过),共20微升体系(2微升连接酶,2微升10×连接buffer, 共做了三个比例即大片段与目的片段两者的摩尔比是1:6 1:10 和1:15),再进行热击转化涂皿,分别做了阳性对照即空载体(长很多单菌落)和阴性对照(无单菌落)可以证明感受态及转化过程没问题,双酶切也成功。可为什么我的连接反应却一个单菌落也长不出来呢(抗性和浓度也没问题),哪位高人帮帮忙???最近快烦死了。。。。。 还有几个疑问: 1 难道是我的载体和片段的浓度不高还是太高,浓度是多少才合适呢? 2 不好连接是不是因为我的载体太大的原因 3 难道要我分步酶切吗? 4 求帮助啊啊啊。。。 |
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RUI1990
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2楼2013-09-13 16:22:32
hl16010921
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我之前也遇到同样的问题,而且要比楼主的还要严重。PCR扩增三个片段,TA克隆连了三个月才有阳性克隆,后来同样用这样的方法分步酶切、回收、连接,构建表达载体。多次都没有成功。也就找各种原因,回收浓度,连接比例,时间,温度,酶切是否完全都感觉是问题的所在,一直重复也没有结果,现在我可以很有理由的告诉你,是胶回收过程影响了连接反应(我们用QIAGEN的盒子,也不行),采用一步法连接就好了: 1:如果你的目标载体的抗性和T载体不同,就好办了。抽提重组质粒和目标载体质粒,按照3:1-8:1的比例T质粒和目标载体,配制酶切体系,然后酒精沉淀回收,直接作为混合物配制连接体系。 2:如果抗性一样,同样参照上述方法,只是要大量降低两种质粒的用量。可以分别将重组质粒和载体分别配制体系进行酶切,然后混合,酒精沉淀,其他同上。 3大量挑取克隆,采用菌液PCR法或根据重组质粒大小不同,采用酶切法鉴定重组子(质粒小量粗提,自己配制试剂,很方便),1号菌斑少,阳性率高。2号抗性一致,需要根据3所述情况分级筛选。 4PCR鉴定的阳性克隆,可再通过质粒酶切检测进一步鉴定。 具体方案可参考我的硕士论文,里面有相同的筛选策略<<亚洲棉种皮特异性启动子的克隆及表达载体构建>> 希望对你有所帮助,祝好!此外,我也是新手,大家相互学习哈! |

4楼2013-09-13 23:54:43
yudaoqian88
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33ggdf: 金币+3 2013-09-14 10:05:59
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1 凝胶回收片段可能会影响后续连接实验; 2 传统构建方法无法成功的情况下,可使用直接法,及酶切产物酒精沉淀法,可提高连接效率,但工作量较大; 3 使用in fusion技术,可以提高连接效率,减少工作量 |
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5楼2013-09-14 00:07:45
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1. 分别用这两个酶做下单酶切验证,包括载体和片段,确定酶切位点没有问题。 2. 如果确定酶切没有问题,双酶切回收后的产物用1—2ul 跑下电泳看下,片段是否回收。 3. 鉴于载体片段很大,因此可以再加大小片段的量,提高比例到1:100都没问题(浓缩下片段)。另外换个酶连接,防止酶失效。 4. 在后期鉴定的时候最好在载体两端找引物进行PCR鉴定,或者找载体上的酶切位点鉴定,防止多拷贝插入。 5. 建议加一个载体片段自连的阴性对照。 |
6楼2013-09-25 19:07:43













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