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北京石油化工学院2026年研究生招生接收调剂公告
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weizhi111

至尊木虫 (正式写手)

[求助] HIS标签的蛋白不挂柱,求助

我表达的蛋白纯化时蛋白出现在穿透液里,还比较浓,附件中的胶图从左向右第6个泳道是穿透液,第7,8,9是洗脱下来的蛋白,最后一个泳道是洗脱完后柱子上残余的(我可能没有洗脱完全)。穿透液中损失掉的占了大部分, 是因为蛋白挂柱不好吗?有什么方法改进一下吗?说明:我的蛋白是在包涵体中的,我用了8M尿素水溶液过夜溶解,第二天抽滤才上样的。banding buffer中含有10mM咪唑,洗脱液含有500mM咪唑,这两种buffer中都加了8M尿素,pH=8.0。总共7ml 样品用了2ml填料。我后来把穿透液重新又用bangding buffe混合,分成了3个柱子(重新加了填料)又过了一遍(摇床上混了好几个小时),洗脱下来的还是很少。求各位有经验的大侠指教!

chunhua brm-3-29.jpg
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robustli

银虫 (小有名气)

【答案】应助回帖

★ ★ ★ ★
感谢参与,应助指数 +1
wizardfan: 金币+2, 谢谢分享经验 2013-03-31 05:57:42
weizhi111: 金币+2, ★★★很有帮助 2013-03-31 09:07:13
降低一下咪唑浓度到2-5mM试试,另外binding buffer中可以加一定浓度的NaCl提高蛋白的溶解,具体的操作步骤可以参考Qiagen公司的方法。
immunologyparasite
2楼2013-03-31 00:40:54
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weizhi111

至尊木虫 (正式写手)

引用回帖:
2楼: Originally posted by robustli at 2013-03-31 00:40:54
降低一下咪唑浓度到2-5mM试试,另外binding buffer中可以加一定浓度的NaCl提高蛋白的溶解,具体的操作步骤可以参考Qiagen公司的方法。

谢谢,我试试降低咪唑浓度吧。我的banding buffer 中已经含有0.14M的NaCl了。
3楼2013-03-31 09:09:26
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joan198108

铁杆木虫 (正式写手)

该不会你的His6表达后被包到蛋白内部去了吧
4楼2013-03-31 09:38:18
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weizhi111

至尊木虫 (正式写手)

引用回帖:
4楼: Originally posted by joan198108 at 2013-03-31 09:38:18
该不会你的His6表达后被包到蛋白内部去了吧

那该怎么解决?还有,各位觉得在buffer中加入巯基乙醇和吐温20怎么样?
5楼2013-03-31 19:11:25
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凌波丽

专家顾问 (知名作家)

我今天刚录入好,回答别人的一个类似问题,顺便贴在此处,以供参考。

目的蛋白没有挂在亲和柱上,可能有四种情况,原因与解决方法如下:
第一种情况:目的蛋白的(His)6标签在重折叠时没有位于蛋白质分子的表面上,或者由于临近的空间的一个或者多个氨基酸的空间位阻阻碍了(His)6与Ni形成螯合的共价键。但是一般情况下,带有(组氨酸)6标签的蛋白质与树脂的结合并不需要蛋白质具有任何功能型结构,即使存在强变性试剂存在时也如此。
不过可能比较少的时候蛋白质的折叠形态发生了改变会隐藏(组氨酸)6标签,而使得蛋白质无法挂柱。这与存在强变性试剂时(组氨酸)6标签无法隐藏并不矛盾,因为有强变性试剂时蛋白质的肽链一般呈伸展状态,而(组氨酸)6亲水性强,且有一定刚性,所以其结和Ni形成螯合的共价键不会有太大的空间位阻。但是如果(组氨酸)6被包括在蛋白质分子之中,那则另当别论了。这样的包裹(组氨酸)6不是不可能形成。
因为比毕竟在一级结构上加了(组氨酸)6标签,一般构建时除了在(组氨酸)6与目的蛋白质之间留有凝血酶等酶切位点外,适当的还要留下几个亲水的氨基酸残基的空档,以免影响目的蛋白质的正常折叠。因为根据蛋白质折叠的拼图”模型(Jigsaw model):组成蛋白质的绝大多数氨基酸决定其折叠,替换其中的少数(≤5%)的氨基酸残基,蛋白质折叠形成的最终构象不会发生改变
   Jigsaw model可能有三种叙述:
   a. 每一种蛋白质可以有不同的折叠路径,2003年S. Giant 等.报道:Cytochrome C551有平行的折叠路径。
   b.组成蛋白质的绝大多数氨基酸决定其折叠,替换其中的少数(≤5%)的氨基酸残基,蛋白质折叠形成的最终构象不会发生改变。
   c.组成蛋白质的氨基酸中那些处于疏水核中的氨基酸残基,与其邻近的其他的氨基酸残基的电荷相互作用和空间楔合,对于蛋白质的折叠和构象稳定性起到了决定性作用。第二种情况:你用buffer不适合目的蛋白的(His)6与Ni形成螯合的共价键。
      第二种情况是溶液环境的影响了蛋白质的折叠形态,使得目的蛋白的(His)6标签在折叠时没有位于蛋白质分子的表面上。影响因素:如pH,离子强度,其他蛋白质分子,缓冲溶液类型,有关影响蛋白质分子表面的试剂等。
     以上两种情况的解决方法:增加所提的蛋白质样品的溶解度,楼主可考虑一下:比如适量增加变性试剂浓度或类型使得蛋白质的肽链松散开暴露出(组氨酸)6标签。另外,还可以加大离子型、非离子型或两性离子表面活性剂的浓度或类型,加大DTT浓度(DTT浓度<1mmol/L,否则DTT会与Ni2+结合),适当调整调高盐浓度(氯化钠溶液低于2mol/L,从低浓度到高浓度逐渐分梯度上升),总之,作用就是增加蛋白质的可溶性,因为(组氨酸)6的亲水性较强,增加可溶性之后(组氨酸)6容易暴露在水相。加大DTT浓度也可以切断二硫键使得蛋白质的肽链松散,进而使(组氨酸)6容易暴露在水相。
第三种情况,有比邻的组氨酸的污染蛋白质与Ni-NTA柱结合,而使得带有(His)6标签的目的蛋白没有了结合位点。第三种情况的解决方法:通过降低洗脱液pH值使得His质子化而使得污染蛋白质从层析住上被洗脱,一般有比邻的组氨酸的污染蛋白质不太可能有(His)6的序列,所以逐渐降低洗脱液pH值时,比邻的组氨酸的污染蛋白质会先被洗脱,而带有(His)6标签的目的蛋白会后被洗脱下来。即使这样估计错了,但是至少我们能够确定:有(His)6的序列的目的蛋白质与不带有有(His)6的序列的污染蛋白质被洗脱下来的pH值肯定不一样,所以可以多分些pH值洗脱,对应不同的洗脱峰我们总可以得到目的蛋白质。如果污染蛋白质含量大,而目的蛋白质含量小,可以分别将收集的洗脱产物再次过柱,当然要鉴定那个样品才是目的蛋白质,只要用那一批样品再次过柱。

第四种可能,一些蛋白质或DNA与带有(His)6标签的目的蛋白发生了非特异性相互作用,而使得带有(His)6标签的目的蛋白因为空间位阻或(His)6标签被遮盖而无法与Ni-NTA柱结合。这是可以用低浓度的去污剂(浓度不大于2%的Triton X-100或浓度不大于0.5%SDS)洗涤样品(上样洗脱时);增加洗脱液的盐浓度(氯化钠溶液低于2mol/L);上样液里加入30%-50%的甘油,已减弱疏水相互作用。

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6楼2013-05-06 20:09:33
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weizhi111

至尊木虫 (正式写手)

送红花一朵
引用回帖:
6楼: Originally posted by 凌波丽 at 2013-05-06 20:09:33
我今天刚录入好,回答别人的一个类似问题,顺便贴在此处,以供参考。

目的蛋白没有挂在亲和柱上,可能有四种情况,原因与解决方法如下:
第一种情况:目的蛋白的(His)6标签在重折叠时没有位于蛋白质分子的表面 ...

很专业啊,长知识了!非常感谢!
7楼2013-05-07 08:15:23
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