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南方科技大学公共卫生及应急管理学院2025级博士研究生招生报考通知
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btx362237729

金虫 (正式写手)


[交流] 神奇的质粒提取,花儿一样神奇的单酶切跑胶!

引言:本人小硕,开始做构建,从实验组其他同学那里要来pcDNA3.1(+)做真核表达载体,一开始酶切就遇到了问题,特来请教!感谢大家指教!

下图为用同学给的pcDNA3.1(+)转化DH5α之后,手提质粒、试剂盒提质粒、3种酶单酶切试剂盒提取质粒的1%琼脂糖电泳图

M: takara的DL 10,000 Marker 1. BamHⅠ单酶切 2. HindⅢ单酶切 3. XhoⅠ单酶切
4. takara试剂盒提取的质粒 5. 碱裂解法酚氯仿抽提的质粒 6. 同学给的质粒pcDNA3.1(+)

单酶切条件为:17ul试剂盒提取的质粒+1ul酶+2ul K Buffer 共20ul体系,37℃水浴4小时

单酶切都切成花朵了,哈哈,不知道有人遇到这个问题没!!!
请教大家这到底是怎么回事?好像同学给的质粒跑胶条带也有问题,怎么两条亮带呢。。。应该不是mRNA,在冰箱放很久了。

下图是试剂盒提取的质粒和手提质粒pcDNA3.1(+)

123为试剂盒提取,456为碱裂解法酚氯仿抽提

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张宏宇123

金虫 (著名写手)



btx362237729(金币+1): 谢谢参与
你酶切浓度有点大吧,你胶浓度是多大,可以增大胶浓度。
质粒放时间长了,线状的质粒就会多
3楼2012-05-31 23:02:51
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genetics183

木虫 (正式写手)



btx362237729(金币+1): 谢谢参与
建议:
1. 电泳时上样量可以少一点;
2. 酶切体系中质粒加少点。
再试试看。
4楼2012-05-31 23:06:11
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btx362237729

金虫 (正式写手)


引用回帖:
3楼: Originally posted by 张宏宇123 at 2012-05-31 23:02:51
你酶切浓度有点大吧,你胶浓度是多大,可以增大胶浓度。
质粒放时间长了,线状的质粒就会多

酶切浓度是什么意思?
其他实验室用的体系是17ul质粒+1ul酶+2ul buffer  切得不错 所以让我也这样做。

是不是他们提的质粒浓度太低,而我的质粒浓度又太高了呢?
7楼2012-05-31 23:37:13
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btx362237729

金虫 (正式写手)


引用回帖:
3楼: Originally posted by 张宏宇123 at 2012-05-31 23:02:51
你酶切浓度有点大吧,你胶浓度是多大,可以增大胶浓度。
质粒放时间长了,线状的质粒就会多

1%的胶
8楼2012-05-31 23:37:34
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btx362237729

金虫 (正式写手)


引用回帖:
4楼: Originally posted by genetics183 at 2012-05-31 23:06:11
建议:
1. 电泳时上样量可以少一点;
2. 酶切体系中质粒加少点。
再试试看。

是指的质粒量少加点吗?我是跑胶后染色的,偏亮貌似比较正常

酶切加了17ul质粒,体系是20ul,确实很多,但是别人这样做效果很好,不知道是不是我的质粒浓度太高了
9楼2012-05-31 23:38:54
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bioqu4

银虫 (小有名气)


★ ★
btx362237729(金币+1): 谢谢参与
btx362237729: 金币+1, 非常感谢 2012-06-01 10:41:48
我觉得应该是酶切体系中质粒量加得太多了。
别人是这样的体系,但别人的质粒浓度和你的是一样的吗?
一般来说,20微升酶切体系只需要加1-6微升用试剂盒提的质粒。质粒加得太多,当然酶切就很困难。
建议你质粒加少点(比如3微升),再做一遍看看。
16楼2012-06-01 06:39:43
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btx362237729

金虫 (正式写手)


引用回帖:
16楼: Originally posted by bioqu4 at 2012-06-01 06:39:43
我觉得应该是酶切体系中质粒量加得太多了。
别人是这样的体系,但别人的质粒浓度和你的是一样的吗?
一般来说,20微升酶切体系只需要加1-6微升用试剂盒提的质粒。质粒加得太多,当然酶切就很困难。
建议你质粒加 ...

恩 酶切条带下面有未切开的超螺旋,目前可以确定是质粒太多了

跑成花儿是因为酶切产物上样太多。。。其实也就5ul,但是因为质粒多所以浓了

感谢你的回答
17楼2012-06-01 09:34:54
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淘气维尼89

木虫 (小有名气)


★ ★
btx362237729(金币+1): 谢谢参与
btx362237729: 金币+1 2012-06-01 10:41:30
你酶切加的质粒太多了吧,第二张的质粒电泳图还不错,就是浓度太高了。酶切位点是不是有问题,质粒应该是空质粒吧?
18楼2012-06-01 09:47:39
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btx362237729

金虫 (正式写手)


引用回帖:
18楼: Originally posted by 淘气维尼89 at 2012-06-01 09:47:39
你酶切加的质粒太多了吧,第二张的质粒电泳图还不错,就是浓度太高了。酶切位点是不是有问题,质粒应该是空质粒吧?

是的 空质粒。。。。。三种酶分别切的,酶切位点应该没问题
19楼2012-06-01 10:15:54
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张宏宇123

金虫 (著名写手)



btx362237729: 金币+1 2012-06-01 10:41:22
引用回帖:
7楼: Originally posted by btx362237729 at 2012-05-31 23:37:13
酶切浓度是什么意思?
其他实验室用的体系是17ul质粒+1ul酶+2ul buffer  切得不错 所以让我也这样做。

是不是他们提的质粒浓度太低,而我的质粒浓度又太高了呢?...

你质粒切的量确实很大啊,以你提的量,我感觉你切3-5ul就够了。你切切试试。
20楼2012-06-01 10:18:13
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btx362237729

金虫 (正式写手)


引用回帖:
20楼: Originally posted by 张宏宇123 at 2012-06-01 10:18:13
你质粒切的量确实很大啊,以你提的量,我感觉你切3-5ul就够了。你切切试试。...

切5ul  够后面的胶回收和连接吗?
21楼2012-06-01 10:38:13
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张宏宇123

金虫 (著名写手)


★ ★ ★ ★
btx362237729: 金币+4, 非常感谢哦 2012-06-01 12:37:36
引用回帖:
21楼: Originally posted by btx362237729 at 2012-06-01 10:38:13
切5ul  够后面的胶回收和连接吗?...

够,而且你这个是载体,载体量不用很多,片段要求量要多,切片段的时候可以多切点。但也不要切17ul,切10ul就可以了。其余的体积用ddH2O补足就行。你试试
22楼2012-06-01 11:53:16
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btx362237729

金虫 (正式写手)


引用回帖:
22楼: Originally posted by 张宏宇123 at 2012-06-01 11:53:16
够,而且你这个是载体,载体量不用很多,片段要求量要多,切片段的时候可以多切点。但也不要切17ul,切10ul就可以了。其余的体积用ddH2O补足就行。你试试...

真心感谢

23楼2012-06-01 12:37:20
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张宏宇123

金虫 (著名写手)


引用回帖:
23楼: Originally posted by btx362237729 at 2012-06-01 12:37:20
真心感谢

...

不客气
24楼2012-06-01 14:14:22
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btx362237729

金虫 (正式写手)


重新切了5ul质粒 条件不变 貌似依然没切完
25楼2012-06-01 20:09:29
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酶切专家

金虫 (小有名气)



小木虫: 金币+0.5, 给个红包,谢谢回帖
像花一样是因为你的制胶是琼脂糖没有完全溶解,质粒出现两条带或三条带都算正常(超螺旋和线性或环状)
26楼2012-06-01 22:49:21
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酶切专家

金虫 (小有名气)



小木虫: 金币+0.5, 给个红包,谢谢回帖
如果要保证完全酶切,你最好对质粒进行定量,根据质量的量加入足够的限制性内切酶,具体可以参考doulbe digestion designer, 小木虫上有,你可以试试。
27楼2012-06-01 22:52:26
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btx362237729

金虫 (正式写手)


引用回帖:
26楼: Originally posted by 酶切专家 at 2012-06-01 22:49:21
像花一样是因为你的制胶是琼脂糖没有完全溶解,质粒出现两条带或三条带都算正常(超螺旋和线性或环状)

不会吧。。我的琼脂糖都反复沸腾4次的。。。。。为什么其他条带不像花儿一样呢?
28楼2012-06-01 23:16:35
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btx362237729

金虫 (正式写手)


引用回帖:
27楼: Originally posted by 酶切专家 at 2012-06-01 22:52:26
如果要保证完全酶切,你最好对质粒进行定量,根据质量的量加入足够的限制性内切酶,具体可以参考doulbe digestion designer, 小木虫上有,你可以试试。

不完全酶切有什么坏处呢?反正都要切胶,没切开的不要不就好了吗?
29楼2012-06-01 23:17:25
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j2

木虫 (正式写手)



小木虫: 金币+0.5, 给个红包,谢谢回帖
试一下上样量低点,上样的时候缓一点
质粒浓度挺高的,酶切的时候质粒量低点吧,用ddH2O补足
30楼2012-06-02 10:35:14
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btx362237729

金虫 (正式写手)


引用回帖:
30楼: Originally posted by j2 at 2012-06-02 10:35:14
试一下上样量低点,上样的时候缓一点
质粒浓度挺高的,酶切的时候质粒量低点吧,用ddH2O补足

上样量降至2ul酶切产物 毫无效果。。。。。
31楼2012-06-02 13:11:57
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我是小纯洁

金虫 (正式写手)



小木虫: 金币+0.5, 给个红包,谢谢回帖
酶切的时候,加4ul载体就撑死了,你还加17ul。。。
你可以这样尝试一下:4ul载体,3ul酶,4ul buffer,29ul水。
32楼2012-06-03 11:28:20
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yingyangyang

木虫 (正式写手)



小木虫: 金币+0.5, 给个红包,谢谢回帖
引用回帖:
9楼: Originally posted by btx362237729 at 2012-05-31 23:38:54
是指的质粒量少加点吗?我是跑胶后染色的,偏亮貌似比较正常

酶切加了17ul质粒,体系是20ul,确实很多,但是别人这样做效果很好,不知道是不是我的质粒浓度太高了...

虽然都是加17uL 但是你们加的质粒的浓度未必一样啊!  17uL是威力保持酶切体系为20uL。  你的质粒浓度过高的话,你应该稀释下,或者少加点补水到17uL。   我当时做酶切就只加了4.5uL质粒,然后补水的。  用1%的胶电泳。  你如果是浓度过高的话,你可以吧质粒做不同梯度的稀释,然后分别酶切,跑电泳。 选取一个适合你的浓度来进行酶切呢!!  也可以电泳时把酶切产物做个梯度稀释然后跑,选个适合的电泳上样量。  跑胶时要是样品上样过大,跑出来会有开花的样子的。我出现过这个情况。
33楼2012-06-03 14:49:10
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wangfei179

木虫 (小有名气)



小木虫: 金币+0.5, 给个红包,谢谢回帖
质粒浓度降到8ul试试。
34楼2012-06-03 16:00:04
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btx362237729

金虫 (正式写手)


引用回帖:
34楼: Originally posted by wangfei179 at 2012-06-03 16:00:04
质粒浓度降到8ul试试。

额。。。5ul都切不完  降到1l条带都很清楚
35楼2012-06-03 19:29:11
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syhorchid2楼
2012-05-31 22:54   回复  
btx362237729(金币+1): 谢谢参与
2012-05-31 23:25   回复  
btx362237729(金币+1): 谢谢参与
zhuyanmei6楼
2012-05-31 23:27   回复  
btx362237729(金币+1): 谢谢参与
2012-05-31 23:39   回复  
btx362237729(金币+1): 谢谢参与
2012-06-01 00:11   回复  
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Scifinder212楼
2012-06-01 00:16   回复  
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2012-06-01 00:17   回复  
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fengmeiyi14楼
2012-06-01 00:28   回复  
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zhaoyanmei15楼
2012-06-01 00:32   回复  
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