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wdongdong

金虫 (小有名气)

[交流] 【求助/交流】蛋白纯化 已有3人参与

我最近在做GST-PULL DOWN ,但纯化的HIS融合蛋白量太低,用的是NOVAGEN 的柱子,杂带到是没什么了,只是纯化的量都不到1mg/ml,所以没法往下做了,请问哪位高手做过,给点建议,HIS融合蛋白的纯化步骤如下:


   用的 buffer:
8 Binding Buffer (8×= 4M NaCl,160mM Tris-HCl,40mM imidazole,pH 7.9)
8×Wash Buffer (8×= 4M NaCl,480mM imidazole,160mM Tris-HCl,pH 7.9)
4×Elute Buffer (4×= 4M imidazole,2M NaCl,80mM Tris-HCl,pH 7.9)
4×Strip Buffer (4×= 2M NaCl,400mM EDTA,80mM Tris-HCl,pH 7.9)
8×Charge Buffer (8×= 400mM NiSO4)


   买的是预装柱子,所以直接纯化:
1、取下预装柱盖子,尽量吸出上方所有保存缓冲液,去掉柱下 Luer 锁紧套口。
2、10ml 1×结合缓冲液平衡树脂后让所有缓冲液尽量流尽。
注意:若未能完全去掉保存液和彻底平衡树脂,树脂的结合力会降低,也可能导致目的蛋白在纯化过程中及后续
的透析步骤中析出形成沉淀。
柱层析纯化目的蛋白
1、待结合缓冲液流干,进行上样(即适量已准备好的细菌裂解物)。
2、10ml 1×结合缓冲液洗柱。
3、10ml 1×漂洗缓冲液洗柱。
4、5ml 1×洗脱缓冲液洗脱结合蛋白。另外,也可使用5ml 1×剥离缓冲液将结合蛋白和 Ni2+同时从柱上洗脱下
来。若需要可分段收集洗脱组分(如每1ml 收集一管)。




哪位高手指教一下,谢谢
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月月大可

木虫 (著名写手)

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dhd997(金币+1):谢谢交流。 2010-06-24 15:17:44
washing使用60mM的咪唑有点高了。这个不是固定值,蛋白结合力比较弱的话都被你给洗掉完了。
washing buffer的浓度最好进行探试,在蛋白获得量和蛋白的纯度中间取个均衡。有些时候可以选择大量低浓度的咪唑洗脱。
如果你不愿意降低washing buffer的浓度,那就大量摇菌吧,一次摇个4-8L的,换个大柱子,纯化完了使用超滤管浓缩。

[ Last edited by 月月大可 on 2010-6-24 at 14:43 ]
3楼2010-06-24 14:41:33
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zemin_fang

木虫 (正式写手)


小木虫(金币+0.5):给个红包,谢谢回帖交流
收集纯化的蛋白,浓缩一下蛋白浓度不就满足要求了?
2楼2010-06-23 20:47:36
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dianaofyezi

金虫 (正式写手)

★ ★
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dhd997(金币+1):谢谢交流。 2010-06-27 11:37:20
不想修改纯化条件就可以将纯化的蛋白浓缩一下,再测定浓度使用。
如果是修改纯化条件,可以按照楼上的方法将washing buffer条件修改一下,也可以设定梯度的浓度,试探的找下哪个浓度最适合。
52187644
4楼2010-06-27 11:33:10
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