被DEAE FF折磨吐了
请教各位前辈,我目前要纯化一种蛋白,无标签,约60KD,PI5.1
实验步骤如下:
样品处理:
1.组织溶于等体积标准盐溶液(含100mM Kcl)样品洗涤超声离心弃上清取沉淀,重复3次
2.沉淀复悬于5倍体积提取液(含500mmNacl)超声离心弃上清取沉淀,重复2次
3.沉淀复悬于Buffer A(10mM 磷酸二氢钠),超声后过滤膜得上柱样品
柱子为DEAE FF 1ml
平衡和洗脱缓Buffer均为磷酸二氢钠(含8M尿素),分别为10mM和1000mM,PH均为7.0
上柱前曾用BufferA(10mM)平衡20个柱体积至基线平稳,上样量为10ml
洗脱方式为梯度浓度洗脱,以2ml/min,10ml一管收集;梯度浓度设置如下
NO 时间 A% B%
1 0 100 0
2 30 90 10
3 90 85 15
4 150 80 20
5 240 60 40
6 300 50 50
7 360 30 70
8 390 0 100
因实验室没有电导仪,所以没有测过电导
出现的问题:
按梯度浓度收集80管样品,总是在第一管出现目的蛋白和一些杂蛋白,后续管里无任何蛋白。尝试过改变PH为6.5,7.5,8.0,结果依然如此。请教各位前辈这是没挂上柱子吗?在不换柱子得情况下有哪些可以改进的地方?
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既然你溶解样品没用尿素,你的纯化缓冲为啥要用尿素?变性后的等电点和理论等电点是不一样的。
我样品是重悬于Buffer A然后上样的,里面含尿素。只是前面粗提取的过程中没有加尿素
,
用的哪家的DEAE-FF,你纯化的目的蛋白是什么,纯度需要多少,收率多少。这些我们都可以给解决,可以做工艺开发,18706882210
你好,我想请问一下你的填料是怎么处理再生的
你好,请问为什么我过这个柱子出现蛋白在不同浓度梯度下被重复洗脱