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张冰宝

新虫 (小有名气)

[求助] 请教包涵体蛋白柱上复性的具体操作步骤,毕业急用,多多帮忙 已有2人参与

我的蛋白时包涵体蛋白,想通过复性把其转变为可溶性的蛋白 ,看了很多文献,说柱上复性比较好,透析方法试了三种结果均非常的不理想,关乎毕业事宜,还请做过得 或者知道的各位多多帮忙啊,感激不尽
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墨尔本机器

金虫 (小有名气)

【答案】应助回帖

★ ★
感谢参与,应助指数 +1
kx444555: 金币+2, 鼓励交流 2015-04-09 08:24:17
Inclusion bodies were separated from the cytosolic protein pool by centrifugation at 20,000 g for 30 min, and the inclusion bodies-containing pellet was solubilized with 4 ml of solubilization buffer (6 M Urea, 200 mM NaCl, 100 mM Tris-HCl, pH 8.3), supplemented with 10 μM β-mercaptoethanol and incubated overnight at 4°C under constant rotation. Thereafter, the sample was spun at 25,000 g for 30 min to remove any insoluble material and the His-tagged protein was purified using HisPurTM Ni-NTA Resin

Hope it works with you. Good luck!
2楼2015-04-08 19:37:55
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15871472357

金虫 (小有名气)

【答案】应助回帖

★ ★
感谢参与,应助指数 +1
张冰宝(kx444555代发): 金币+2, 鼓励交流 2015-04-09 08:24:22
包涵体洗涤
1)各取超裂液 1485μL加入 1.5mL 离心管中,加 20%DOC 储存液至终浓度为 0.2%。加 1mol/L 的 DTT 储存液至终浓度 0.6mmol/L,充分混匀。4℃静置 10min 以上。
2)12000 r/min 离心 5min。
3)加入 PBS 1350μL、20%DOC 储存液至终浓度为 2%,充分重悬沉淀。室温静置 10min 以上。
4)12000 r/min 离心 5min,弃上清。
5)加入 PBS1350μL、20%DOC 储存液至终浓度为 2%,充分重悬沉淀。室温静置 10min 以上。
6)12000 r/min 离心 5min,弃上清。
取离心沉淀用预冷的 PBS 重悬,SDS-PAGE 分析包涵体洗涤情况
3楼2015-04-08 22:41:27
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张冰宝

新虫 (小有名气)

引用回帖:
3楼: Originally posted by 15871472357 at 2015-04-08 22:41:27
包涵体洗涤
1)各取超裂液 1485μL加入 1.5mL 离心管中,加 20%DOC 储存液至终浓度为 0.2%。加 1mol/L 的 DTT 储存液至终浓度 0.6mmol/L,充分混匀。4℃静置 10min 以上。
2)12000 r/min 离心 5min。
3)加入 P ...

非常感谢你的帮助,我想问一下这样洗涤包涵体得到的就是比较纯的包涵体吗?doc与dtt的作用示什么呢?我一般都是离心菌液获得包涵体,然后进行超声破碎然后进行纯化。那你这样洗涤完以后得到的是包涵体还是可溶性蛋白?
4楼2015-04-09 09:10:20
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张冰宝

新虫 (小有名气)

引用回帖:
3楼: Originally posted by 15871472357 at 2015-04-08 22:41:27
包涵体洗涤
1)各取超裂液 1485μL加入 1.5mL 离心管中,加 20%DOC 储存液至终浓度为 0.2%。加 1mol/L 的 DTT 储存液至终浓度 0.6mmol/L,充分混匀。4℃静置 10min 以上。
2)12000 r/min 离心 5min。
3)加入 P ...

非常感谢你的帮助,我想问一下这样洗涤包涵体得到的就是比较纯的包涵体吗?doc与dtt的作用示什么呢?我一般都是离心菌液获得包涵体,然后进行超声破碎然后进行纯化。那你这样洗涤完以后得到的是包涵体还是可溶性蛋白?
5楼2015-04-09 09:10:41
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张冰宝

新虫 (小有名气)

引用回帖:
2楼: Originally posted by 墨尔本机器 at 2015-04-08 19:37:55
Inclusion bodies were separated from the cytosolic protein pool by centrifugation at 20,000 g for 30 min, and the inclusion bodies-containing pellet was solubilized with 4 ml of solubilization buffer ...

thank you for your attention
Some details need to be confirmed:
1,Urea is a denaturant, whether the protein is denatured after dissolution
2,The need for  agitation when constant rotated?
3,the sample was spun at 25,000 g for 30 min to remove any insoluble material ,so The supernatant is  the soluble protein,right?
6楼2015-04-09 09:26:38
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15871472357

金虫 (小有名气)

【答案】应助回帖

引用回帖:
4楼: Originally posted by 张冰宝 at 2015-04-09 09:10:20
非常感谢你的帮助,我想问一下这样洗涤包涵体得到的就是比较纯的包涵体吗?doc与dtt的作用示什么呢?我一般都是离心菌液获得包涵体,然后进行超声破碎然后进行纯化。那你这样洗涤完以后得到的是包涵体还是可溶性蛋 ...

超声波破碎后离心得到包涵体,取沉淀然后在用上法,doc和dtt的作用我也不清楚,这样就可以达到可溶性蛋白。可以通过SDS-PAGE来验证,作个对比,有条带就表示有可溶性蛋白
7楼2015-04-09 14:09:31
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张冰宝

新虫 (小有名气)

引用回帖:
7楼: Originally posted by 15871472357 at 2015-04-09 14:09:31
超声波破碎后离心得到包涵体,取沉淀然后在用上法,doc和dtt的作用我也不清楚,这样就可以达到可溶性蛋白。可以通过SDS-PAGE来验证,作个对比,有条带就表示有可溶性蛋白...

非常感谢 我会按照你的方法试一下的
8楼2015-04-10 13:58:05
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张冰宝

新虫 (小有名气)

引用回帖:
7楼: Originally posted by 15871472357 at 2015-04-09 14:09:31
超声波破碎后离心得到包涵体,取沉淀然后在用上法,doc和dtt的作用我也不清楚,这样就可以达到可溶性蛋白。可以通过SDS-PAGE来验证,作个对比,有条带就表示有可溶性蛋白...

能给一下DOC及DTT的全称吗?因为没用过,怕买错了
9楼2015-04-10 15:18:37
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