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zzlei

金虫 (小有名气)

[求助] 蛋白过镍柱,出现大量沉淀,请教各位已有1人参与

破碎离心完之后推滤了一下,然后过镍柱,分别用20mL 20mM咪唑(25mM Tris,100mM NaCl)、80mM咪唑、150mM咪唑、350mM咪唑、500mM咪唑洗脱,发现自150mM就能洗出目的蛋白,但杂蛋白也很多。350mM洗脱时蛋白发生沉淀,且15mL的量基本能把柱子里的蛋白全洗脱下来,500时基本就什么都没有了。
试着将350的沉淀用硫酸铵溶解,但效果不好,透析用25mM Tris,300mM NaCl,仍然沉淀挥之不去。透析一直在4℃下搅拌进行。请教各位高手们,是咪唑浓度太高导致了沉淀?沉淀的蛋白是因为变性而无法再溶解?透析液我分别调了100mM NaCl、200mM、300mM,还适当加了5%、10%甘油试着溶解沉淀,但都没有效果。希望大家帮我分析一下到底是什么原因引起的。纯化N多次了,每次都是350的咪唑就沉淀了
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pennchem

专家顾问 (正式写手)

【答案】应助回帖


感谢参与,应助指数 +1
zzlei: 金币+1, 有帮助 2015-02-01 08:46:44
先用低浓度的咪唑洗掉杂质,然后用EDTA洗脱你的蛋白,如果蛋白可溶,然后透析去掉EDTA以及Ni(II)
镍柱重生一次就好了。
行至水穷处,坐看云起时
6楼2015-01-28 21:12:42
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zzlei

金虫 (小有名气)

自顶,求助,急求
2楼2015-01-27 10:49:52
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zzlei

金虫 (小有名气)

除了用咪唑洗脱镍柱之外,还能用别的代替吗?
3楼2015-01-27 10:50:47
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qwbio123

新虫 (小有名气)

【答案】应助回帖


感谢参与,应助指数 +1
zzlei: 金币+1, 有帮助 2015-02-01 08:46:20
不过我觉得你300mM咪唑应该都能把你目的蛋白洗脱下来的,不知道你是如何选择那几种咪唑浓度的?你要考虑你加到很高浓度咪唑的时候咪唑本生会有一个很高的咪唑峰。
4楼2015-01-28 14:23:51
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lihe131

至尊木虫 (文坛精英)

【答案】应助回帖


感谢参与,应助指数 +1
zzlei: 金币+1, 有帮助 2015-02-01 08:46:36
这种情况还是比较常见的。我采取的方法是,先准备一个小烧杯,里面盛有无咪唑的缓冲液,洗脱下来的蛋白在离开镍柱后,直接滴在小烧杯里。全程冰上或4度。
祝顺利!
5楼2015-01-28 16:10:39
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lxgnh166

银虫 (正式写手)

【答案】应助回帖

感谢参与,应助指数 +1
你的PH是多少,每个蛋白都有个合适的PH,PH不合适回导致沉淀,NI层析你也可以考虑PH梯度洗脱。
7楼2015-01-30 08:51:58
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CandiceYoung

新虫 (初入文坛)

【答案】应助回帖

感谢参与,应助指数 +1
想办法降低蛋白镍柱结合度,提高平衡液镍柱浓度,降低pH试试。再不行就配合离子交换柱纯化,不要在一根柱子上吊死。
8楼2015-01-30 09:36:49
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CandiceYoung

新虫 (初入文坛)

【答案】应助回帖

提高平衡液 咪唑浓度 盐浓度
9楼2015-01-30 09:38:12
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zzlei

金虫 (小有名气)

那个蛋白透析时将盐浓度调到20mM、100mM、200mM、300mM试了,都不行,难道是因为之前已经沉淀变性了无法再溶解了?
最近又换做了另一个蛋白,这个蛋白师兄们做都没有问题,很纯,表达量也很高,但我一做又出现类似上述的问题。他们说350咪唑时有一部分蛋白,但从未出现过沉淀,500时能收到很纯的。但我的基本都在350洗下来了,而且基本全部沉淀了。500里面也有,也浑浊着。。。  
同样试着换了盐浓度,还是没效果。
是不是我操作过程哪儿出问题了?导致在过程中蛋白就变性了?记得以前溶菌超声离心完后得到的蛋白清液基本都是透明的,但现在每次得到的都看着很浑浊。之前我还以为是蛋白表达量很高的原因。
是不是我超声过程出问题了?溶菌用的20mM hepes,得到80mL,分两次超声,每次20~30min
10楼2015-02-01 08:56:47
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