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答案24

木虫 (初入文坛)

高中

[求助] Tricine SDS-PAGE的样品缓冲液与蛋白质样品

Tricine SDS-PAGE的样品缓冲液与蛋白质样品的混合比例,以及是否要煮沸,如果有蛋白质的lodding buffer ,是否还需要样品缓冲液?
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牧炀

金虫 (小有名气)

【答案】应助回帖

引用回帖:
8楼: Originally posted by x1989y0205z at 2013-10-27 22:58:17
谢谢你的回复,这个我下次试一下。我再请问一下,我的溴酚蓝在电泳的过程中,在浓缩胶没有压缩成一条线,就是那种很弥散的、很宽的溴酚蓝前沿,可是最后跑到分离胶的低端时确又成了一条线,最后染色,脱色之后,发 ...

你可以适当增加浓缩胶的长度,让样品浓缩效果加强些;
然后你检查下配浓缩胶的时候你的贮液的pH是不是正确。把电压稍微调低点
9楼2013-10-28 11:59:28
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牧炀

金虫 (小有名气)

【答案】应助回帖


感谢参与,应助指数 +1
myprayer: 金币+1, 赠人玫瑰,手有余香。分子生物期待你更多精彩 2013-08-29 18:09:08
1、我也在做Tricine  不过样品处理液与蛋白质的比例要你自己试验过脱色之后才能知道的而且看你蛋白分子量大小和胶的浓度的。 不过我跑的是18%的胶,处理样品都是5μl粗品加20μl蒸馏水+25μl样品缓冲液;纯的蛋白的话按1:2的比例,就是10μl样品+20μl蒸馏水+30μl样品缓冲液;遇到分离后浓度极低的蛋白可以考虑增加样品量,浓度高就减少。

2、要煮沸的。我是煮沸3min。

3、lodding buffer其实跟样品处理液一样的,估计是没有巯基乙醇只含DTT,但是你要看清楚lodding buffer的浓缩倍数,到底是几乘的,稀释成1X处理液,稀释的时候要保证完全溶解。


嘎...祝楼主实验顺利
2楼2013-08-29 16:08:29
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答案24

木虫 (初入文坛)

高中

引用回帖:
2楼: Originally posted by 牧炀 at 2013-08-29 16:08:29
1、我也在做Tricine  不过样品处理液与蛋白质的比例要你自己试验过脱色之后才能知道的而且看你蛋白分子量大小和胶的浓度的。 不过我跑的是18%的胶,处理样品都是5μl粗品加20μl蒸馏水+25μl样品缓冲液;纯的蛋白的 ...

谢谢您的答复
我做的是混合蛋白,没有测浓度,有蛋白粗提取液,这样的话,还要加水再加样品缓冲液吗?
我的样品缓冲液的配方如下:1ml甘油(100%)   0.5ml巯基乙醇   1ml 0.5mol/L Tris-HCL(PH6.8)   溴酚蓝(0.02%)   加入至5ml蒸馏水中,分装成1ml 大小。
请指点一二
认真仔细乐观的对待每一天
3楼2013-08-29 22:20:52
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牧炀

金虫 (小有名气)

【答案】应助回帖

★ ★
gyesang: 金币+2, 鼓励回帖应助! 2013-08-30 18:06:28
引用回帖:
3楼: Originally posted by 答案24 at 2013-08-29 22:20:52
谢谢您的答复
我做的是混合蛋白,没有测浓度,有蛋白粗提取液,这样的话,还要加水再加样品缓冲液吗?
我的样品缓冲液的配方如下:1ml甘油(100%)   0.5ml巯基乙醇   1ml 0.5mol/L Tris-HCL(PH6.8)   溴酚蓝(0 ...

1、你用lowry和bradford测下混合蛋白的浓度,然后参考电泳结果确定。而且粗提液的话我自己做的时候基本都加水,因为浓度实在太高了。加样量建议不超过5μl,不然条带很难分的清的,也可以按3μl、4μl、5μl……。

2、加水的比例的话你自己可以做一个梯度加样,按不同比例比如1:2:3,5μl样品+10μl蒸馏水+15μl样品缓冲液,也可以1:4:5等等……直到你跑的条带彻底分开并且很清晰的时候。

3、我样品缓冲液的配比这样的:0.5mol/LTris-HCl(pH6.8)  1ml、巯基乙醇0.5ml、SDS 0.2g、溴酚蓝0.01g、甘油1ml(100%)、加水7.5ml配成10ml的样品处理液。
4楼2013-08-30 15:05:12
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