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憨憨可爱多

木虫 (正式写手)

[求助] 为什么我总是 提不纯DNA啊,

为什么我用试剂盒总是提不纯植物DNA啊,提很多次了,每次都是提不纯,烦死了
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bullfrog325

木虫 (正式写手)

路过, 楼主的问题没法答呀, 实验过程什么的再描述详细点?
2楼2013-06-04 02:07:03
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憨憨可爱多

木虫 (正式写手)

引用回帖:
2楼: Originally posted by bullfrog325 at 2013-06-04 02:07:03
路过, 楼主的问题没法答呀, 实验过程什么的再描述详细点?

就是按照试剂盒说明的步骤做的啊,氯仿抽提,氯仿抽提了之后离心上清液有些浑浊,而且有的在上清液表层有一层绿色的膜,
3楼2013-06-04 07:34:32
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lion1998

铜虫 (正式写手)

【答案】应助回帖

感谢参与,应助指数 +1
试剂盒也是有不同的,你不说是怎样步骤,别人也不可能知道是哪种试剂盒啊
Iamaleafonthewind.
4楼2013-06-04 08:25:59
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憨憨可爱多

木虫 (正式写手)

1.        取植物新鲜组织0.1g,加入液氮充分研磨成粉末状。样品量不超过0.1g,过多的样品使得裂解不充分,最终会导致基因组DNA提取量减少。
2.        实验前,在1.5ml离心管中加入800ul的Lysis Buffer,于65℃下预热,然后加入β-巯基乙醇至终浓度为0.1%(0.8ul-1ul)。
3.        将研磨好的粉末加到以上预备好的Lysis Buffer中,65℃水浴20-30min,其间颠倒混匀样品数次。
4.        加入500ul氯仿,充分混匀,12000rpm离心5min。(若植物组织富含酚类、糖类(淀粉),应在此步骤前进行50ul酚:氯仿=1:1抽提一次)
5.        小心吸取上层水相转入一个新的离心管中,加入700ul Binging buffer,充分混匀。
6.        将混匀的液体转入离心柱中(可分次转入),12000rpm离心1min。
7.        加入700ul Wash Buffer A,12000rpm离心1min,弃废液。
8.        加入700ul Wash Buffer B,12000rpm离心1min,弃废液。
9.        加入500ul Wash Buffer B,12000rpm离心1min,弃废液。
10.        再次12000rpm离心2min,将离心柱置于新的离心管中,并打开离心柱盖,于室温或37℃放置5-10min,至无明显乙醇味。
11.        加入50-200ul(100ul)TE buffer(事先预热55-65℃),置于室温2-5min,12000rpm离心2min,离心管中即为所提取的基因组DNA溶液。
5楼2013-06-04 11:19:52
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蓝慧

木虫 (正式写手)

【答案】应助回帖

感谢参与,应助指数 +1
换试剂盒吧。推荐Omega的
向着目标前进!
6楼2013-06-04 13:43:51
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bullfrog325

木虫 (正式写手)

【答案】应助回帖

★
感谢参与,应助指数 +1
憨憨可爱多(myprayer代发): 金币+1, 赠人玫瑰手有余香,感谢你的慷慨解囊,期待你的精彩。 2013-06-04 18:13:05
氯仿抽提了之后离心的上清一定要清澈, 如果发现有浑浊现象的话你要再次离心, 离心时间长点要考虑离心的温度, 4C为好
7楼2013-06-04 15:33:54
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taojun

木虫 (著名写手)

【答案】应助回帖

感谢参与,应助指数 +1
你哪家的试剂盒啊,换一个吧
8楼2013-06-04 15:56:36
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yiloutingyu

铜虫 (小有名气)

【答案】应助回帖

感谢参与,应助指数 +1
你用的是鼎国的对吗? 我以前也是用的这个。我没测过纯度,不过实验室里博士说鼎国的不好。建议你最后一步得到DNA后,然后再倒回离心柱里离心2min。然后你再测测 估计会好一些。
9楼2013-06-04 23:11:22
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chenguestc

木虫 (职业作家)

【答案】应助回帖

★
感谢参与,应助指数 +1
kx444555: 金币+1, 鼓励交流 2013-06-16 16:05:38
加入氯仿异戊醇之后尽量多混匀几分钟,吸上清尽量少不要贪多,可以多用氯仿异戊醇抽提1-2次。
或者,如果样品足够多,用50ML离心管提,DNA量会比较大,用枪头把DNA挑出即可。
10楼2013-06-05 07:50:49
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