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南方科技大学公共卫生及应急管理学院2025级博士研究生招生报考通知
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nongdaylf

铁虫 (初入文坛)

[求助] 求助!大肠杆菌转化不长菌落~

我做的是空载体的大肠杆菌转化,然后挑单菌落提取质粒。
现在已经做了三次,但是都没有出结果~
材料如下:
空载体是5微升质粒干粉加进40微升Eluent(Eluent是Takala公司质粒提取试剂盒中的)稀释,初始浓度为160.5ng/μl,然后分别稀释10倍(测试后浓度为15.0ng/μl)和100倍(7.0ng/μl,应该是浓度太低,测得不精确)。
感受态是Takala的DH5α
具体步骤如下:
1。分别取以上三种各1μl加入到50μl感受态中,冰浴30min,用枪头轻轻混匀。
2。在42℃中放置45s。
3。放入冰浴中2min。
4。在操作台中加入500μlLB培养基无抗体。
5。在30摄氏度培养箱中200转1h。
6。5000rpm/min中离心1min。
7。在无菌操作台中取出上清液450μl,然后剩余的100μl全部涂板(Amp抗性),倒置到37℃培养箱中。
结果:不涨菌落。。
问题:
是不是浓度太大的问题,还是操作步骤有问题,求各位指导

[ Last edited by 1949stone on 2012-8-24 at 17:05 ]
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小白
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dshlove

木虫 (正式写手)

【答案】应助回帖

★ ★ ★ ★ ★ ★ ★ ★ ★ ★ ★ ★ ★ ★ ★ ★ ★ ★ ★ ★ ★ ★ ★
感谢参与,应助指数 +1
小丹木木: 金币+3, 鼓励积极应助,解答问题 2012-08-21 16:07:45
nongdaylf: 金币+5, ★★★很有帮助 2012-08-22 17:44:09
nongdaylf: 金币+15 2012-08-22 20:13:30
几点意见:
1,质粒就用初始浓度的就好了,1μl足够了。不能用枪吹打,用手指轻弹小离心管外壁就行了,混匀之后放置半小时。
2,应该放37度摇床,220rpm差不多,1.5小时。
3,没必要离心,就直接取100μl涂板就行了。有时候太浓密了,会看不到明显菌落,会像没长一样。
4,涂板一定要等玻璃棒冷却,不然会烫死菌的。
5,在培养箱中先正放半小时,再倒置,而且平板要提前半小时预热。
6楼2012-08-21 13:20:45
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huangguoqing

木虫 (正式写手)

【答案】应助回帖

★ ★ ★ ★ ★ ★ ★ ★
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小丹木木: 金币+3, 鼓励积极解答问题 2012-08-21 16:06:27
amisking: 回帖置顶 2012-08-21 20:02:27
nongdaylf: 金币+5, ★★★很有帮助 2012-08-22 20:12:57
个人认为你可以修改几个条件
1.适当增加点质粒的量,但不要超过总体的十分之一就好;
2.DH5a感受态热击90s试试;
3.复苏培养的时候培养基改成SOC会好很多;
4.这时候的菌很脆弱,最好把转速降低点,之前有过同学只是放在恒温培养箱里静置就可以的;
5.离心时间可以增长点,比如5min;
6.涂板的时候只要涂布均匀即可,不需要太长时间;
7.涂布之后,最好正面朝上静置几分钟,新平板就时间长点,旧平板就时间短点。
个人意见,仅供参考!
2楼2012-08-21 11:54:04
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普通回帖

tanglian8655

金虫 (正式写手)

【答案】应助回帖

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小丹木木: 金币+3, 鼓励热心应助 2012-08-21 16:06:43
amisking: 回帖置顶 2012-08-21 20:02:28
我觉得你转化之后,培养的温度,转速和时间都可以修改一下,可以调成37℃,250rpm培养2.5h,培养之后只需要进行短暂离心,不需要离心那么久,
你涂好的平板最好是平放半小时使菌液充分吸收后在倒置培养,
42℃应激的时间为90s。
也有可能你操作不当,转化效率极低造成
3楼2012-08-21 12:05:21
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yesucao

木虫 (正式写手)

【答案】应助回帖

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小丹木木: 金币+3, 鼓励积极解答问题 2012-08-21 16:07:03
amisking: 回帖置顶 2012-08-21 20:02:32
1、加入质粒的时候,感受态应该是处于冰水混合的状态时是最好的,不要等它全融化了再加;
2、质粒1微升的加入量有点少,可以适当多加点,3-4微升;
3、42度热激90s后,立即冰浴;
4、大肠杆菌摇床是在37度,转速190rpm  1h就可以了;
5、注意或许也有感受态的问题;
6、加入的AMP的浓度是否正确;
7、涂布的时候把液体涂干,不要有水;或者涂布完后打开盖子一点,让风吹干,之后再37度倒置培养。
4楼2012-08-21 12:43:21
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crusoe

木虫 (正式写手)


【答案】应助回帖

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第一步中的用枪轻轻混匀是不是不妥?应该是先混匀再在冰上放置30min吧。
5楼2012-08-21 12:57:00
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nongdaylf

铁虫 (初入文坛)

引用回帖:
6楼: Originally posted by dshlove at 2012-08-21 13:20:45
几点意见:
1,质粒就用初始浓度的就好了,1μl足够了。不能用枪吹打,用手指轻弹小离心管外壁就行了,混匀之后放置半小时。
2,应该放37度摇床,220rpm差不多,1.5小时。
3,没必要离心,就直接取100μl涂板就行 ...

谢谢,我的平板一点菌都没有涨。
有人说浓度只要是pg就可以了,是么,还有的说小于10ng,也有的说100ng,应该是多少呢。
小白
7楼2012-08-21 14:35:41
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nongdaylf

铁虫 (初入文坛)

引用回帖:
5楼: Originally posted by crusoe at 2012-08-21 12:57:00
第一步中的用枪轻轻混匀是不是不妥?应该是先混匀再在冰上放置30min吧。

谢谢,我的平板一点菌都没有涨。
有人说浓度只要是pg就可以了,是么,还有的说小于10ng,也有的说100ng,应该是多少呢。
小白
8楼2012-08-21 14:35:50
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nongdaylf

铁虫 (初入文坛)

引用回帖:
4楼: Originally posted by yesucao at 2012-08-21 12:43:21
1、加入质粒的时候,感受态应该是处于冰水混合的状态时是最好的,不要等它全融化了再加;
2、质粒1微升的加入量有点少,可以适当多加点,3-4微升;
3、42度热激90s后,立即冰浴;
4、大肠杆菌摇床是在37度,转速 ...

谢谢,我的平板一点菌都没有涨。
有人说浓度只要是pg就可以了,是么,还有的说小于10ng,也有的说100ng,应该是多少呢。
小白
9楼2012-08-21 14:36:01
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nongdaylf

铁虫 (初入文坛)

引用回帖:
3楼: Originally posted by tanglian8655 at 2012-08-21 12:05:21
我觉得你转化之后,培养的温度,转速和时间都可以修改一下,可以调成37℃,250rpm培养2.5h,培养之后只需要进行短暂离心,不需要离心那么久,
你涂好的平板最好是平放半小时使菌液充分吸收后在倒置培养,
42℃应激 ...

有人说浓度只要是pg就可以了,是么,还有的说小于10ng,也有的说100ng,应该是多少呢。
小白
10楼2012-08-21 14:36:13
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