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qurande

金虫 (小有名气)

[求助] 129bp小片段从pGEM-T上酶切回收的问题

129bp的小片段连接到pGEM-T载体上之后,菌落pcr鉴定条带正确,测序序列正确并且专门在测序结果中search过引物序列也正确

酶切体系  质粒          12ul(大约100ng/ul)
           bufferD           2.5ul
             nde1             0.9ul     (promega的内切酶)
               sal1             0.9ul  
            补水到25ul    37度  4h   做两管反应,浓缩

然后跑2%的琼脂糖胶 两管酶切产物在一个胶空里跑电泳  当100bp的marker能分清条带的时候,却看不见目的条带

后来我有小量的双酶切试了试,质粒3ul ,内切酶分别用0.2ul,10ul体系酶切2h,还是没有出现目的条带
希望高手给出指点啊
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beautybanana

木虫 (著名写手)

【答案】应助回帖

★ ★
dhd997(金币+2): good 2011-06-02 09:10:10
引用回帖:
Originally posted by qurande at 2011-06-01 08:42:01:
129bp的小片段连接到pGEM-T载体上之后,菌落pcr鉴定条带正确,测序序列正确并且专门在测序结果中search过引物序列也正确

酶切体系  质粒          12ul(大约100ng/ul)
           bufferD           2.5ul
...

先把链接的载体电泳下看看有没有连接上(以pGEM-T载体为对照)连接上了说明就是酶切的问题,先把第一步确认好再说,连接上了,那就再调整酶切体系~PCR正确只是确定你扩增到了目的片段,但你连接的问题还没有确定~
2楼2011-06-01 08:51:31
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terry130

木虫 (正式写手)

【答案】应助回帖

★ ★ ★
qurande(金币+1): 谢谢你的建议 2011-06-01 12:07:01
dhd997(金币+3, EPI+1): good 2011-06-02 09:10:23
首先,小片段在胶里的染色信号要弱一些,有可能看不到,建议不要在配胶的时候加EB,而是电泳结束后用EB去染。
其次,你在大切前是应该做小切去确定酶切条件的,先大切失败然后想到小切是满痛的一个教训,你老板知道估计要发飙吧。
最后,小切验证是要有很多control的,这样才便于分析,同时切你自己的样品和别人的已经酶切成功过的样品作为对比,切的时候除了双切之外还要分别做单切,跑胶的时候每个样品都有四个lane分别是切前,单切,单切,双切,这样才能分析出问题出在哪里。
还有有的时候某个公司的酶针对某个载体就是不好用,那不妨换另一个公司的试试,我们实验室常用的酶都是有好几个公司的stock的。
摒气动方息,宁神心自明。
3楼2011-06-01 09:12:28
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terry130

木虫 (正式写手)

【答案】应助回帖

忘记说了,小切的话你用3ul有点少,至少要保证0.5mg,这样电泳才能看到带
摒气动方息,宁神心自明。
4楼2011-06-01 09:13:23
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空谷幽风

金虫 (正式写手)

【答案】应助回帖

★ ★ ★ ★ ★
qurande(金币+5): 说的很到位谢谢 2011-06-01 12:06:40
dhd997(金币+5, EPI+1): good 2011-06-02 09:10:38
看不到条带很正常,原因如下:
1.PGEM-T载体的分子量约为3000bp,你的片段为130bp左右,那么载体和片段的分子量之比是23:1。
2.你酶切时质粒的量约为1200ng,即1.2ug,不知道这个浓度是你测的还是估算的,保守点的话在1ug左右
3.假定EB显色的机理你都明白,那么酶切完跑胶后片段的亮度应为载体亮度的二十三分之一,片段的质量约为1000/23约为40ng,其实加上其他的一些损失误差之类的,很可能到不了这个量
4.你用的mark每条带都有一个浓度,乘上你加的体积就算这条带出质量了
建议:1.小片段直接用引物扩增后使用,尽量不要通过酶切来获得,即使跑胶能看到,回收效率也很低,这个你该懂
2.如果执意要酶切获得,只有多切些质粒
a?,c??ae~?a,EURc§?c?μé-,cs,,a‘?é?“i1/4?i1/4?i1/4?i1/4?
5楼2011-06-01 10:14:00
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qurande

金虫 (小有名气)

引用回帖:
Originally posted by 空谷幽风 at 2011-06-01 10:14:00:
看不到条带很正常,原因如下:
1.PGEM-T载体的分子量约为3000bp,你的片段为130bp左右,那么载体和片段的分子量之比是23:1。
2.你酶切时质粒的量约为1200ng,即1.2ug,不知道这个浓度是你测的还是估算的,保守点 ...

小片段直接用引物扩增后使用 怎么使用啊,我要连接另一个载体,需要粘性末端,另外,pcr产物我直接双酶切   连载体没有成功,上网查到说是我用的两个酶不仅仅需要它专用的酶切位点,还需要一段酶切位点前面的序列来帮助内切酶作用到酶切位点上去
6楼2011-06-01 10:32:46
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空谷幽风

金虫 (正式写手)

【答案】应助回帖

★ ★ ★
西瓜(金币+3): 鼓励交流 2011-06-08 18:56:33
引用回帖:
Originally posted by qurande at 2011-06-01 10:32:46:
小片段直接用引物扩增后使用 怎么使用啊,我要连接另一个载体,需要粘性末端,另外,pcr产物我直接双酶切   连载体没有成功,上网查到说是我用的两个酶不仅仅需要它专用的酶切位点,还需要一段酶切位点前面的序 ...

要发生酶切,需要在酶切位点前面加上适当数目的保护碱基,常用的酶一般有3个保护碱基就够了,但是考虑到pcr的时候容易在两端发生碱基的丢失,所以我习惯添加5个保护碱基。所以你的引物的5‘端要在酶切位点前面加上保护碱基后去扩增片段,扩完后就可以酶切使用了
a?,c??ae~?a,EURc§?c?μé-,cs,,a‘?é?“i1/4?i1/4?i1/4?i1/4?
7楼2011-06-01 10:56:07
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qurande

金虫 (小有名气)

引用回帖:
Originally posted by 空谷幽风 at 2011-06-01 10:56:07:
要发生酶切,需要在酶切位点前面加上适当数目的保护碱基,常用的酶一般有3个保护碱基就够了,但是考虑到pcr的时候容易在两端发生碱基的丢失,所以我习惯添加5个保护碱基。所以你的引物的5‘端要在酶切位点前面 ...

pcr产物酶切完毕需要纯化或者跑胶切胶回收么?
8楼2011-06-01 11:54:00
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qurande

金虫 (小有名气)

引用回帖:
Originally posted by 空谷幽风 at 2011-06-01 10:56:07:
要发生酶切,需要在酶切位点前面加上适当数目的保护碱基,常用的酶一般有3个保护碱基就够了,但是考虑到pcr的时候容易在两端发生碱基的丢失,所以我习惯添加5个保护碱基。所以你的引物的5‘端要在酶切位点前面 ...

悲剧了,我选的两个酶上游nde1  下游 sal1 都需要很长的保护碱基,我的都只有3个啊~~~



9楼2011-06-01 12:11:38
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空谷幽风

金虫 (正式写手)

引用回帖:
Originally posted by qurande at 2011-06-01 12:11:38:
悲剧了,我选的两个酶上游nde1  下游 sal1 都需要很长的保护碱基,我的都只有3个啊~~~



重新设计引物吧,或者酶切的时候多加些质粒
a?,c??ae~?a,EURc§?c?μé-,cs,,a‘?é?“i1/4?i1/4?i1/4?i1/4?
10楼2011-06-01 22:05:16
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