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sxxuan

金虫 (著名写手)

[求助] 最近原核表达载体构建都是假阳性或阴性多,大家帮忙分析一下? 已有3人参与

本来实验按照流程做都是很顺利的,因为都是比较简单的克隆,但最近的问题实在太多,实验一拖再拖,我都不好意思面对同事的询问了。首先实验是搬了新的实验室后开始的,有几个原料又买了新的批次
1. 连接酶:仓库送货时下面垫两个冰袋,上面叠放着几包连接酶,这样送过来,这里的温度大概28度
2. 酶切:做原核表达的pET28a载体,我用Takara的BamHI和HindIII双酶切,载体20ul,酶各1ul,buffer5ul,补水至50ul,双酶切时间分别为2,2.5,3h,跑胶发现3h的跑胶就是全部弥散的,2和2.5h的正常有条带。而用Fermentas的快速酶切,切20min,拿纯化后的载体(理论上是线性的)转化大肠杆菌,还是正常长菌,可能是有没有酶切的质粒导致的。
3. PCR产物或割胶纯化:双酶切的目的条带不弱,但纯化后拿产物去跑胶都是没有条带或很弱。
4. 连接:我们一般是1ul载体,2ul连接酶,2ul buffer,15ul PCR纯化产物
5. 感受态细胞:买回来后,仓库的同事用冰袋送过来,或者放到-20了,再给我们送过来放回-80。抗议过很多次都没效果,就用TSS法自己做感受态了
6.转化:转化后菌的大小不均一,差别挺大的,但没有拍到图。挑菌鉴定的话是大的菌落有阳性结果
7.菌液鉴定:我们都是挑菌落到LB里摇4h左右,加菌液作为模板鉴定,有定性或荧光定量的方法,根据菌液不同而不同。出现两种极端情况,一是全部阴性,但PCR纯化产物是阳性的有条带,排除了体系问题。二是全部都是强阳性例如Ct14左右,送测序都是空载体。正常来讲菌液鉴定的Ct值20左右算很正常。
8. 诱导:本来可以正常诱导的菌突然摇不起来,就是测序正确的菌株,一般1%接种量,2-3h可以到达OD0.6,加入IPTG诱导,可以得到浓度很高的蛋白,但现在是要6h才能到0.6,然后表达量比之前低了大概1000-10000倍

我自己是怀疑由于冷链的问题,导致连接酶和感受态细胞不可用或者效率低。我尝试过在OD0.2-0.3的时候诱导,是可以拿到正常浓度的蛋白。
其他方面的问题,请大家多提意见多交流,看下我们有没有改进的方面,最近实在被这个折腾惨了
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yang0071

木虫 (职业作家)

【答案】应助回帖

★ ★ ★
感谢参与,应助指数 +1
sxxuan: 金币+3, ★★★很有帮助 2016-05-18 16:01:20
xn8008: 应助指数+1 2016-06-26 06:45:07
1、这个一定要改,酶活性不行的话,直接影响后续工作
2、双酶切的话,酶的量1ul略多了,结合第一点,酶可能产出星号活性,所以条带弥散;
     快速酶切20min,本身就切不完全,只是能切一部分用于后续的实验
3、没纯化好
、、、、
先改掉上述情况,再看
2楼2016-05-18 15:03:22
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yang0071

木虫 (职业作家)

引用回帖:
3楼: Originally posted by sxxuan at 2016-05-18 16:01:10
非常感谢
1.这个我们不能保证可以改,因为涉及到送货不是我们可以决定,现在在争取。
2.0.5ul的酶量可以?就是普通酶切还是由于快速酶切?
3.没有纯化好的话,因为是按照试剂盒步骤,不知道哪步有问题...

2  普通酶切
3  胶完全溶解了吗?洗脱前,离心完全了吗?洗脱时,洗脱液量多少,加热了吗?
5楼2016-05-18 16:40:55
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普通回帖

sxxuan

金虫 (著名写手)

引用回帖:
2楼: Originally posted by yang0071 at 2016-05-18 15:03:22
1、这个一定要改,酶活性不行的话,直接影响后续工作
2、双酶切的话,酶的量1ul略多了,结合第一点,酶可能产出星号活性,所以条带弥散;
     快速酶切20min,本身就切不完全,只是能切一部分用于后续的实验
3、 ...

非常感谢
1.这个我们不能保证可以改,因为涉及到送货不是我们可以决定,现在在争取。
2.0.5ul的酶量可以?就是普通酶切还是由于快速酶切?
3.没有纯化好的话,因为是按照试剂盒步骤,不知道哪步有问题
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3楼2016-05-18 16:01:10
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jinfangli

铜虫 (小有名气)

【答案】应助回帖

★ ★ ★ ★ ★ ★
感谢参与,应助指数 +1
sxxuan: 金币+5, ★★★很有帮助 2016-05-19 09:36:55
myprayer: 金币+1, MolEPI+1, 赠人玫瑰·手有余香,谢谢你的理解与支持。祝您科研顺利,文章多多。 2016-06-25 23:39:49
xn8008: 应助指数+1 2016-06-26 06:44:59
自己也遇到过这种很是怪异的实验结果,以前做的好好的突然怎么做都出不来的。此情况下,我主要从下面几点做起
1,全面消毒,紫外,消毒剂,摇床高温各种(很有用的,偶尔要不出来菌落,就消下毒就好了)
2,质粒重新双酶切,1h是最长时间,大于就会切杂乱,回收一定要重复过回收柱,包括洗脱,增大回收效率。
3,单菌落不均一时,重新转化,控制体系,包括质粒最多1ul到100ml感受态或者连接体系4℃连接后再转化,平板要加大营养。
4,质粒单菌落一致后才能做表达菌,此时表达菌的菌落应该是均一的,可一管中挑取多个克隆或者一整片培养。
fight
4楼2016-05-18 16:14:06
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sxxuan

金虫 (著名写手)

引用回帖:
5楼: Originally posted by yang0071 at 2016-05-18 16:40:55
2  普通酶切
3  胶完全溶解了吗?洗脱前,离心完全了吗?洗脱时,洗脱液量多少,加热了吗?...

好呢,明白,我按照你的提问去了解清楚,谢谢。
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6楼2016-05-19 09:11:38
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sxxuan

金虫 (著名写手)

引用回帖:
4楼: Originally posted by jinfangli at 2016-05-18 16:14:06
自己也遇到过这种很是怪异的实验结果,以前做的好好的突然怎么做都出不来的。此情况下,我主要从下面几点做起
1,全面消毒,紫外,消毒剂,摇床高温各种(很有用的,偶尔要不出来菌落,就消下毒就好了)
2,质粒重 ...

我试过普通双酶切2h,纯化后直接1ul转化感受态细胞,也长菌了是否代表没有完全酶切?
连接体系20ul,一般拿10ul去转化,然后全部菌拿去涂板,是否太多?但长出来的菌落也不是很多。
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7楼2016-05-19 09:36:42
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jinfangli

铜虫 (小有名气)

【答案】应助回帖


xn8008: 金币+1, 应助指数+1, 欢迎积极回帖 2016-06-26 06:45:36
引用回帖:
7楼: Originally posted by sxxuan at 2016-05-19 09:36:42
我试过普通双酶切2h,纯化后直接1ul转化感受态细胞,也长菌了是否代表没有完全酶切?
连接体系20ul,一般拿10ul去转化,然后全部菌拿去涂板,是否太多?但长出来的菌落也不是很多。...

还是纯化后再转化的还长菌,首先看切下来的片段跟你原质粒相差多少,差的不多,那切胶就容易混,差得多,电泳多跑会就会拉开,回收就不会出问题,若这种情况都长菌,那可能是抗性出现问题,换跟此有关的试剂;
连接转化效率都有限,就是全部涂板,这个没问题,长出来一两个都是正常的。
fight
8楼2016-05-19 11:33:49
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jinfangli

铜虫 (小有名气)

引用回帖:
7楼: Originally posted by sxxuan at 2016-05-19 09:36:42
我试过普通双酶切2h,纯化后直接1ul转化感受态细胞,也长菌了是否代表没有完全酶切?
连接体系20ul,一般拿10ul去转化,然后全部菌拿去涂板,是否太多?但长出来的菌落也不是很多。...

还是纯化后再转化的还长菌,首先看切下来的片段跟你原质粒相差多少,差的不多,那切胶就容易混,差得多,电泳多跑会就会拉开,回收就不会出问题,若这种情况都长菌,那可能是抗性出现问题,换跟此有关的试剂;
连接转化效率都有限,就是全部涂板,这个没问题,长出来一两个都是正常的。
fight
9楼2016-05-19 11:33:56
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sxxuan

金虫 (著名写手)

引用回帖:
9楼: Originally posted by jinfangli at 2016-05-19 11:33:56
还是纯化后再转化的还长菌,首先看切下来的片段跟你原质粒相差多少,差的不多,那切胶就容易混,差得多,电泳多跑会就会拉开,回收就不会出问题,若这种情况都长菌,那可能是抗性出现问题,换跟此有关的试剂;
连 ...

因为切下来的片段才十几bp,确实是分不开的
我试试换个抗生素。谢谢啊真的很好的建议
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10楼2016-05-19 12:07:25
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