| 查看: 5917 | 回复: 8 | ||||||
[交流]
双顺反子 表达载体的构建——求助!
|
|
正在构建双顺反子表达载体,用的是pet-32a 有几个问题请教高人指点 1、第一个基因需不需要ATG还是直接用成熟肽,终止密码子需不需要去掉; 2、第二个基因之前除了要加RBS序列还需要添加别的序列吗,ATG是否需要带着;3、第二个基因从哪里开始编码是否RBS会被识别成三联密码子翻译成相应氨基酸; 4、第二个基因不加RBS,第一个基因不加终止密码子,是否会使两条多肽串联起来,这样形式的蛋白经过变性复性能否具有相应的生物学活性(两个多肽,是同一蛋白的两个亚单位) |
» 收录本帖的淘帖专辑推荐
分子生化实验经验积累 | 药学科研资料 | 核酸方面 |
» 猜你喜欢
HILIC磁珠研究蛋白组学怎么做?
已经有0人回复
His标签蛋白纯化怎么才能快?
已经有0人回复
化学工程及工业化学论文润色/翻译怎么收费?
已经有89人回复
WRN变构抑制剂HRO761:从D1/D2界面锁定到MSI合成致死的工具化合物深度解析
已经有0人回复
KRAS G12V(ON) 选择性抑制剂 RMC-5127:从三元复合物机制到科研应用
已经有0人回复
SHP2 变构抑制剂 Sitneprotafib:从作用机制到科研试剂选型要点
已经有0人回复
PRMT5·MTA 抑制剂 MRTX1719 的科研应用
已经有0人回复
SW033291 科研使用解析:分子特征、储存与实验获取要点
已经有0人回复
泛 RAS 抑制新思路:大环肽拟似物如何同时牵住突变型与野生型 RAS?
已经有0人回复
TYK2/JAK1 双靶点工具化合物 Brepocitinib:激酶选择性、研究进展与实验应用全解析
已经有0人回复
矢车菊素-3-O-葡萄糖苷质控实录:从一张HPLC图谱读懂纯度与稳定性
已经有0人回复
» 本主题相关价值贴推荐,对您同样有帮助:
pMD18-T载体连接了目的片段后双酶切鉴定出现了好多条带 怎么回事?
已经有6人回复
组氨酸标签的问题
已经有27人回复
一条成熟mRNA可否翻译两条蛋白?
已经有9人回复
【求助/交流】表达载体pCAMBIA1304表达顺序看不懂
已经有12人回复
micro ? small ? short ? RNA
已经有6人回复
【求助/交流】表达载体转化后,提取的质粒和原来不一样了啊
已经有5人回复
【求助/交流】大肠杆菌有的是表达载体的宿主,有些事克隆载体的宿主,他们的区别在哪�
已经有10人回复
【求助/交流】PET32a 表达载体和PMD19-T 克隆载体,是否可以用之前养在DH5a里扩增?
已经有12人回复
【求助/交流】真核细胞到底是单顺反子还是多顺反子???
已经有5人回复
【求助/交流】目的基因连接表达载体后涂板不长菌
已经有11人回复
【求助/交流】什么是组成型表达载体
已经有4人回复
【求助/交流】酿酒酵母表达载体的构建问题
已经有6人回复
【求助/交流】在构建基因表达载体的时候什么时候需要人为地在上面加上启动子?
已经有6人回复
【求助/交流】连接表达载体PET-28A失败原因
已经有23人回复
【求助/交流】原核表达载体pGEX-4T-1对应的表达菌株
已经有6人回复
【求助/交流】酿酒酵母真核表达载体构建和连接的问题
已经有6人回复
★ ★ ★ ★ ★ ★ ★
小木虫: 金币+0.5, 给个红包,谢谢回帖
单单VS双双: 金币+5 2013-08-28 10:19:09
myprayer: 金币+1, 赠人玫瑰,手有余香。分子生物期待你更多精彩 2013-08-28 13:53:06
小木虫: 金币+0.5, 给个红包,谢谢回帖
单单VS双双: 金币+5 2013-08-28 10:19:09
myprayer: 金币+1, 赠人玫瑰,手有余香。分子生物期待你更多精彩 2013-08-28 13:53:06
|
1. 如果你指向表达成熟肽,可以去掉原序列里的信号肽编码序列,但是需要有ATG作为起始密码子。这样表达出来的产物比成熟肽多一个Met。如果你不想把两个基因融合表达,就不要去掉第一个序列的终止密码子。 2. 第二个基因之前不用加核糖体结合位点。pet-32a用的是强启动子,没有终止子序列的情况下核糖体不会脱落。第二个基因的ATG需要保留,第二个基因就是从其ATG开设表达。 3. 两个序列之间不用保持阅读框,除非你想做成融合蛋白。 3. 融合蛋白是否保留原来的活性的确要看是否正确折叠成独立结构,一般会在两个蛋白之间加linker。 |
2楼2013-08-28 02:29:54
3楼2013-08-28 10:18:26
★ ★ ★
小木虫: 金币+0.5, 给个红包,谢谢回帖
gyesang: 金币+2, 鼓励回帖交流! 2013-08-28 19:21:27
小木虫: 金币+0.5, 给个红包,谢谢回帖
gyesang: 金币+2, 鼓励回帖交流! 2013-08-28 19:21:27
|
1. 你可以选择不同的酶切位点克隆来实现表达产物带什么tag。pET-32a的确可以在N端融合多个tag,并且这些tag是可以在纯化后切除的。这种情况,你实际上是先表达出带标签的融合蛋白,所以第一个目的基因的ATG可以不要,但要注意序列的阅读框与前面的融合标签相符,避免移码。 2. his-tag留一个就可以了。载体这样设计是为了克隆方便。有些蛋白的N端或者C端对活性很重要,只有一边的标签纯化出来的蛋白有活性。 3. 第一个基因的终止密码子不会影响第二个基因的表达,有终止密码子可以避免形成融合蛋白。当然如果你想做融合表达的话,应该去掉第一个基因的终止密码子。第二个基因的TAA如果保留,表达出来的蛋白的C端是没有his-tag。 |
4楼2013-08-28 11:40:12
5楼2013-08-28 12:38:24
★ ★
小木虫: 金币+0.5, 给个红包,谢谢回帖
myprayer: 金币+1, 赠人玫瑰,手有余香。分子生物期待你更多精彩 2013-08-28 13:53:20
小木虫: 金币+0.5, 给个红包,谢谢回帖
myprayer: 金币+1, 赠人玫瑰,手有余香。分子生物期待你更多精彩 2013-08-28 13:53:20
|
2. 用不用强启动子和需不需要RBS有毛线关系。 启动子只控制转录,核糖体结合位点是必须的,关于连续的bicistron 表达具体可以参考以下三篇文章。 http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/23474465 http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/23034349 http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/22983090 结论就是,如果使用E coli本身启动子,那么第二个CDS翻译强度首先会随着距起始位点变远而下降(当然在使用T7 RNAP时候,在2-3Kbp以内可能不是很明显) 如果第一段CDS的stop codon 出现在RBS后面,那么第一个CDS的翻译会帮助解除mRNA的二级结构,从而帮助第二个cistron的翻译(强度只取决于RBS的序列,和第二个CDS的起始部分无关,没有RBS几乎不翻译) 如果第一段CDS的Stop codon在第二个RBS之前,那么第二个CDS的翻译很不好预测,可以通过RBS二级结构进行一些分析,不过准确率大概就50%(具体看 http://www.nature.com/nbt/journal/v27/n10/full/nbt.1568.html ) 所以此时如果想有效的去除5‘sequence 对第二个cistron的影响,可以使用我上面提到的第二 三篇文章的方法,当然最简单的方法就是再克隆一遍启动子往后的序列,这样最保险。 |
6楼2013-08-28 12:49:21
7楼2013-08-28 13:54:02
★
小木虫: 金币+0.5, 给个红包,谢谢回帖
小木虫: 金币+0.5, 给个红包,谢谢回帖
|
1. 距离不重要,但rbs的interaction只和序列有关,影响未知 2. 是的比如我给你的第一篇文章出现类似(aggaggt)tttaatg的序列时如果第一个蛋白质翻译在TAAtg的TAA终止,(括号内是RBS),那么如果从最后的ATG起始时可以保住消除mRNA二级结构 3. 指你如果用自由能预测RBS强度 4. 省事得话直接另外加一个promoter,这样是最不用操心的。 其次把你的第二个RBS 扔到https://salis.psu.edu/software/ 这里算下活性,和去掉第一段cds作为上游序列时比较下,差异不大,并且数字还可以(至少几K吧),可以考虑 更麻烦但是理论上可以用的方法,参考上面的第二篇文章(第一篇文章需要特定RBS序列出现在第一个蛋白里,一般不符合你的情况。),在第一个Stop condon后面加一个RiboJ序列(最好稍微有点距离),这样最后mRNA会被RiboJ分成两段独立的mRNA |
8楼2013-08-28 22:00:55
9楼2013-08-28 22:12:31










回复此楼