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真核表达his-tag蛋白纯化后没有活性
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具体的实验总结: 1. 表达载体pHis1522,表达菌Bacillus Megaterium,中文叫巨大芽孢杆菌,木糖启动子 2. 目的蛋白A很大,300多KD,his-tag在蛋白c端 3. 成熟的protocal和paper,之前的实验室其他人提取出来过 4. 我表达后电泳跑出来了,但是没有毒性 5. 表达的时候同时做了与其同源的同构建载体的另一个蛋白B的表达,同protocal,没有问题,当然,B表达量高 6. 因为实验室不是做蛋白的实验室,没有高级的纯化系统,用的是Merck的重力柱,手动梯度洗脱。 现在很纠结的就是没活性,木糖启动子是37度诱导,paper上说的是12-16h诱导,我降温到30度,提取没活性,降温到25度,不挂柱,超声2s,停10s binding buffer 没有咪唑的 |
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3楼2012-12-25 16:18:28
reallpf
木虫 (正式写手)
- MicEPI: 21
- 应助: 150 (高中生)
- 金币: 3388.3
- 散金: 2
- 红花: 12
- 帖子: 342
- 在线: 72.6小时
- 虫号: 1892494
- 注册: 2012-07-14
- 性别: GG
- 专业: 微生物生理与生物化学
【答案】应助回帖
感谢参与,应助指数 +1
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先要确定问题出在表达还是纯化阶段:拿阳性对照,同时测纯化前后样品的活力。 如果是纯化阶段,建议测序检验His-tag是否加在基因后面了;如果成功添加His-tag,就要从纯化的方式上考虑了。 如果没有较好的纯化柱子,建议将样品超滤脱盐后测酶活。因为离子对酶活也会有影响。 如果纯化前的样品就没有活力,那么问题就比较复杂了。因为你的SDS-PAGE结果有目的蛋白,而且是在成熟protocol和paper的基础上,那么可以确定蛋白是得到表达了,而且方法没有问题。所以需要从你使用的宿主考虑了。我朋友的经历,表达一个酶,比你的结果更奇怪,总是有条带没酶活或者有较低酶活但是没有条带。 认为需要确认酶是否需要某些后加工,而使用的宿主无法提供;或者有酶原序列的问题;另外可以考虑真对你的宿主优化密码子以及培养发酵条件。 个人观点。 |
2楼2012-12-21 16:19:56







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