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dudu1161

银虫 (小有名气)

[交流] 【求助/交流】蛋白纯化后透析及浓缩问题

虫友们,大家好!请教大家一个问题,不胜感激。
    蛋白纯化时洗脱缓冲液为300 mM NaCl; 350 mM imidazole,50 mM sodium phosphate buffer, pH 8.0。因为后续实验要肠激酶切割,所以用肠激酶缓冲液来透析,但是透析过夜后沉淀。原因可能是透析缓冲液的pH值(7.4)与目的蛋白等电点(7.2)相差太近。
       然后用Amicon超滤离心管来除盐、浓缩,效果不好,可能也有操作不熟练问题,基本没有浓缩效果。
    所以还是想通过透析,冻干的方法来达到除盐、浓缩的目的,但是用肠激酶缓冲液的话又会沉淀,而且冻干后对溶液也有一个浓缩的效果。
    现在我有两种想法:
    一、将肠激酶缓冲液的pH值调到8.5,透析过夜,问题是冻干后会将蛋白所在缓冲液一起冻干浓缩;
    二、将超纯水的pH值调到8.5,透析过夜。
    不知虫友们有没有更好的解决方法,请虫友们不吝赐教,多谢大家!
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sqhnsd

金虫 (正式写手)

★ ★
dudu1161(金币+1):谢谢参与
silicare(金币+1):谢谢参与 2010-08-31 12:04:12
引用回帖:
Originally posted by dudu1161 at 2010-08-25 15:48:02:
虫友们,大家好!请教大家一个问题,不胜感激。
    蛋白纯化时洗脱缓冲液为300 mM NaCl; 350 mM imidazole,50 mM sodium phosphate buffer, pH 8.0。因为后续实验要肠激酶切割,所以用肠激酶缓冲液来透析,但是 ...

可以用pH8.0的buffer,然后调节至pH7.4.还有,你可以透析直接透析你的蛋白,然后加一点(0.1-0.5% saryksal,一种阴离子去垢剂)溶解你的蛋白,不过之前你要测试一下肠激酶在这种条件下有没有活性,
2楼2010-08-25 17:00:57
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dudu1161

银虫 (小有名气)

多谢指点

引用回帖:
Originally posted by sqhnsd at 2010-08-25 17:00:57:
可以用pH8.0的buffer,然后调节至pH7.4.还有,你可以透析直接透析你的蛋白,然后加一点(0.1-0.5% saryksal,一种阴离子去垢剂)溶解你的蛋白,不过之前你要测试一下肠激酶在这种条件下有没有活性,

感谢指点,因为实验室没有 saryksal,所以我就用1*肠激酶缓冲液透析(调节pH至8.4),对照组是0.01*肠激酶缓冲液透析(调节pH至8.4),结果透析过夜后1*沉淀,0.01*未沉淀,不知道这其中的原因是什么?
冻干后加水,蛋白很难溶解,像是悬浊液般没有完全溶解。
请多多指教,多谢!
Stop walking today and you will have to run tomorrow!
3楼2010-08-29 11:43:47
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sqhnsd

金虫 (正式写手)

dudu1161(金币+3): 2010-08-31 09:37:26
引用回帖:
Originally posted by dudu1161 at 2010-08-29 11:43:47:


感谢指点,因为实验室没有 saryksal,所以我就用1*肠激酶缓冲液透析(调节pH至8.4),对照组是0.01*肠激酶缓冲液透析(调节pH至8.4),结果透析过夜后1*沉淀,0.01*未沉淀,不知道这其中的原因是什么?
冻干 ...

这个我也有点困惑,50nM的NACL是不会引起蛋白沉淀的。你考虑下纯化好蛋白,在加咪唑之前直接将柱料加入肠激酶的buffer,然后加入肠激酶,之后离心去除His-tag,你试过没有
4楼2010-08-29 14:34:00
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dudu1161

银虫 (小有名气)

方法很好 值得一试

引用回帖:
Originally posted by sqhnsd at 2010-08-29 14:34:00:

这个我也有点困惑,50nM的NACL是不会引起蛋白沉淀的。你考虑下纯化好蛋白,在加咪唑之前直接将柱料加入肠激酶的buffer,然后加入肠激酶,之后离心去除His-tag,你试过没有

感觉您说的方法很妙 也省了不少步骤 这样就是蛋白的浓度无法确定 肠激酶也不知加多少才好 那就根据之前的经验值做吧 今天正好做纯化 可以小量试一下 多谢指点 希望能继续交流
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5楼2010-08-31 09:42:57
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dudu1161

银虫 (小有名气)

引用回帖:
Originally posted by sqhnsd at 2010-08-29 14:34:00:

这个我也有点困惑,50nM的NACL是不会引起蛋白沉淀的。你考虑下纯化好蛋白,在加咪唑之前直接将柱料加入肠激酶的buffer,然后加入肠激酶,之后离心去除His-tag,你试过没有

其实,我感觉最大的问题就是肠激酶缓冲液的pH值(7.4)与目的蛋白等电点(7.22)相差太近,这样就容易产生沉淀。
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6楼2010-08-31 10:03:43
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月月大可

木虫 (著名写手)

★ ★ ★ ★ ★
dudu1161(金币+1):谢谢参与
西瓜(金币+4): Good!哥们很犀利啊! 2011-12-13 19:05:30
引用回帖:
1楼: Originally posted by dudu1161 at 2010-08-25 15:48:02:
虫友们,大家好!请教大家一个问题,不胜感激。
    蛋白纯化时洗脱缓冲液为300 mM NaCl; 350 mM imidazole,50 mM sodium phosphate buffer, pH 8.0。因为后续实验要肠激酶切割,所以用肠激酶缓冲液来透析,但是 ...

咪唑是否影响你后期的实验???

如果不影响问题就变得简单了很多。
elution buffer 直接使用你后期反应buffer,加入咪唑。连洗脱带换buffer一步完成,需要浓度高一些的话就表达大量蛋白挂在柱子上,用少量的buffer洗脱。你要知道亲和层析过程除了纯化话另外一个作用就是浓缩!
7楼2011-12-13 17:08:35
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laokuang1988

铜虫 (小有名气)


dudu1161(金币+1): 谢谢参与
引用回帖:
2009247楼: Originally posted by sqhnsd at 2010-08-29 14:34:00
这个我也有点困惑,50nM的NACL是不会引起蛋白沉淀的。你考虑下纯化好蛋白,在加咪唑之前直接将柱料加入肠激酶的buffer,然后加入肠激酶,之后离心去除His-tag,你试过没有...

我也在做这个实验,我想问纯化好的蛋白不是已经有了咪唑吗
8楼2012-06-08 16:36:06
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风影一生

新虫 (正式写手)


dudu1161(金币+1): 谢谢参与
有条件的话过一次分子筛,既除盐又除小分子杂质,体积大一点也没关系,反正最后你还要冻干
9楼2013-08-20 09:14:13
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