【转贴】常用蛋白酶活力测定--福林-酚法(包括缓冲液选择)【已搜无重复】
测定过程中要处理好几个关键点,如酪蛋白溶解要比较好。
采用福林酚法。
1 标准曲线的绘制
(1)酪素溶液的配置
精确称取酪素2.000g,先用少量的0.5mol/l氢氧化钠润湿后,加入少量的相应缓冲液,在沸水浴中加热,经常但不要剧烈的搅拌使完全溶解。冷却后移入100ml容量瓶中,并用相应的缓冲液定容至刻度。酪素溶液可在4℃保存一周,变质时不能使用。
(2)按下表配置不同浓度的酪氨酸
表1 酪氨酸的稀释表
管号 酪氨酸浓度(ug/ml) 酪氨酸溶液体积(ml) 0.2 N Hcl(ml)
1 0 0 10
2 10 1 9
3 20 2 8
4 30 3 7
5 40 4 6
6 50 5 5
7 60 6 4
各取1ml,各加5mlNaCO3溶液,1ml福林试剂,置于40土0.2℃水浴中显色,取出,在680nm处比色,测定吸光度。以吸光度为纵坐标,酪氨酸的浓度为横坐标,绘制标准曲线。
5.2待测酶液的制备
称取酶粉0.1,精确至0.0001,用相应缓冲液溶解,并用玻璃棒捣研,然后将上清液小心倾入容量瓶中,沉淀中再加入少量上述缓冲液。如此溶解、捣研次,最后全部转入容量瓶中,用缓冲液定容至刻度,摇匀。
5.3 比色测定
精确吸取待测酶液1.0ml(每个样品3支平行试管),40℃水浴预热2min。同时取适量1%酪素溶液在40℃水浴预热3~5min,然后取其1.0ml,加入到经预热的上述酶液中,立即开始计时,于40℃水浴精确反应10min,立即加入2.0ml0.4mol/L三氯乙酸,摇匀,取出静置10min,过滤,取滤液1.0ml。加入0.4mol/L碳酸钠溶液5.0ml,以后按标准曲线绘制步骤测定样品吸光度。
同时进行空白对照测定,其步骤为吸取待测酶液1.0ml,40℃水浴2 min后加入2.0ml 0.4mol/L三氯乙酸,40℃水浴10min,然后加入1%酪素溶液1.0ml ,取出静置10min,过滤,取滤液1.0ml,以后步骤同于样品测定。
6.计算
X=(A×K×4×n)/(1×10)
式中:X-样品的酶活力,u/g;
A-样品平行试验的平均吸光度;
K-比色常数;
4-反应试剂体积(ml);
n-样品稀释倍数(制备成的酶液ml数/2g酶粉),ml/g;
1-参与反应的酶液量,ml;
10-反应时间,min。
[ Last edited by shinefeng on 2007-12-16 at 12:52 ]
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K值如何确定?
k就是标准曲线方程中将A值赋为1得到的酪氨酸的浓度值
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