请问大家OD260/OD280是怎么操作的啊
是用TE溶液稀释的DNA吗,还是纯水,一般多少倍稀释啊,由于提取的DNA少,是加几ul稀释到2-3ml吗(比色皿是常规的,要装2-3ml),另外怎么调零的啊,调两次0吗,是用TE或纯水在260nm调下零,然后加DNA进去那个调零的比色皿里,测吸光值,再另外拿个比色皿再调零,再加dna后看OD280吗?这样好浪费材料啊?不知道大家具体操作怎样啊,求指点啊?谢谢 返回小木虫查看更多
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是用TE溶液稀释的DNA吗,还是纯水,一般多少倍稀释啊,由于提取的DNA少,是加几ul稀释到2-3ml吗(比色皿是常规的,要装2-3ml),另外怎么调零的啊,调两次0吗,是用TE或纯水在260nm调下零,然后加DNA进去那个调零的比色皿里,测吸光值,再另外拿个比色皿再调零,再加dna后看OD280吗?这样好浪费材料啊?不知道大家具体操作怎样啊,求指点啊?谢谢 返回小木虫查看更多
你在的学校或研究所单位有核酸定量仪吗?我们都是直接用定量仪测浓度,这个比值会自动显示的。
没有呢,有紫外可见分光光度计,不知道怎么分别调零,用什么溶解DNA啊
TE溶解DNA,测定时取1微升,加999微升水,紫外分光光度计如果有全波长扫描功能,直接扫一下,记录260/280即可,如我以前用过UV2401PC,挺方便的。调零使用蒸馏水即可。如果楼主手头紫外分光光度计比较简单,可以考虑准备两只比色皿(尽量挑在加蒸馏水后在260 nm 280 nm比色皿间差值不大的),一只装水调零,另一只加样品测定。
那应该用TE调零吧,因为是用TE溶解的DNA啊,我们实验室的比色皿要装到2ml作右才能让光线通过出不留空白,我上次用试剂盒法提取的dna,结果用10ul稀释到2500ul,稀释了25倍,测得吸光度是0.004,这样按计算DNA浓度(μg / μl):OD260×稀释倍数×50/1000=0.05ug/ul,测得的OD260/OD280比值为1.4,不在1.8-2之间,我取了7ul的DNA去跑琼脂糖电泳,按道理有350ngDNA了,那个marker指示带我算了下750bp的含量是300ng总量,结果跑琼脂糖电泳标准条带都跑出来了,样品条带一点影子都没有。不知道是什么原因,另外想问下你,你们一般跑DNA琼脂糖,加多少dna总量可以跑出条带,做第一轮PCR,所加DNA的模板量里DNA含量在多少ng比较合适呢?谢谢啊,希望有经验的人指导下
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有微量比色管,可以不用稀释那么多。稀释太多误差也变大。
你最好找微量比色皿,或者最好有核酸测定仪。DNA跑电泳,加样十微升,有200-300 ng DNA就可以看到条带(估计值,实际没测过。这个实际上还要考虑DNA大小,同样质量DNA,分子量大,摩尔数就小,电泳时就不好看到)。做PCR,哺乳动物基因组DNA,模板量应每个反应有1 微克DNA,酵母细菌质粒DNA,分别为10 ng,1 ng,1 pg
nanodrop微量紫外检测器可以直接读出数据,而且每次用量只要1微升就了。