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xiaosheng123

新虫 (初入文坛)

[交流] 镍柱有很多杂蛋白是缓冲液的问题还是什么问题? 已有6人参与

可溶性蛋白的纯化
1) 平衡缓冲液:pH7.4的50mM磷酸缓冲液含0.5M NaCl,含20mM咪唑。
2) 洗脱缓冲液:pH7.4的50mM磷酸缓冲液含0.5M NaCl,含500mM咪唑。
3) 取1ml镍琼脂糖凝胶FF或镍NTA琼脂糖凝胶FF预装柱,用10ml平衡缓冲液平衡,然后取破碎上清10ml样品以0.5ml/min上样,然后2ml/管分管收集。
4) 用15ml平衡缓冲液洗去未吸附的样品,流速1-2ml/min,2ml/管收集。
5) 用5 ml洗脱缓冲液洗去未吸附的样品,流速1-2ml/min,2ml/管收集。
6) 再用5ml平衡缓冲液平衡柱子,灌满20%乙醇,封闭。
这些是我实验用到的,可以镍柱纯化效果还是不理想,杂蛋白,怎么办?
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super_mm

金虫 (小有名气)


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你的洗脱缓冲液咪唑浓度太高了。一般的带His标签的蛋白100-200左右的浓度就洗下来了,而且比较纯,主要摸索200mM以下的咪唑浓度。一般是20mM递增
4楼2014-10-11 10:39:54
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wolfman840

木虫 (正式写手)


小木虫: 金币+0.5, 给个红包,谢谢回帖
你的洗脱缓冲液含咪唑的浓度需要摸索,按你的说法,是直接洗脱了。你可以试试梯度洗脱。方法如下
1.平衡,用10ml平衡buffer冲洗镍柱。0.5ml/min,收集,1ml/管。
2.load,样品用0.25ml/min流速,上样。最好上样前测一下你的蛋白吸光度,在穿过液中再测一下。如果达到10%上样吸光度,就不要上了。(前提是你有在线监测UV的)
3.平衡,用10ml平衡buffer冲洗镍柱,0.5ml/min,收集,1ml/管。
4.洗脱,用20ml洗脱buffer以0.5ml/min流速进行线性洗脱。1ml/管收集。检测你的目的蛋白,收集纯度较高的一段。
5.再生。5ml洗脱buffer以0.25ml/min流速清洗柱子后,立即用平衡buffer冲洗20ml。加20%乙醇,封闭。
2楼2014-10-08 14:22:56
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fudan木子

禁言 (初入文坛)


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3楼2014-10-09 16:30:11
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灵岩苏

禁言 (小有名气)

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5楼2014-10-11 17:50:39
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