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SDS-page 原核表达蛋白 电泳条带弥散 已有6人参与
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求助，最近做了N块胶，有15%的分离胶，也有5%-20%的梯度胶跑出来的蛋白不成条带？？以前不这样啊？ 菌液IPTG诱导完，离心沉淀菌体，PBS重悬，加4XSDS上样缓冲液（终浓度为1X）煮沸5min，13000rpm离心12min，在4℃保存，第二天电泳。 ![\"SDS-page](\"https://muchongimg.xmcimg.com/data/bcs/2013/1006/w158h1911237_1381061914_706.jpg#opennewwindow\")  ![\"SDS-page](\"https://muchongimg.xmcimg.com/data/bcs/2013/1006/w102h1911237_1381061927_393.jpg#opennewwindow\") |
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 蛋白质生物学实验经验 | 核酸生物学实验经验 |
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2楼2013-10-06 23:07:08
3楼2013-10-07 20:47:15
凌波丽
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小木虫: 金币+0.5, 给个红包，谢谢回帖
kx444555: 金币+5, 鼓励交流 2013-10-07 21:43:40
小木虫: 金币+0.5, 给个红包，谢谢回帖
kx444555: 金币+5, 鼓励交流 2013-10-07 21:43:40
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SDS电泳带弥散和拖尾的原因和改进措施(2013-10-7) 1.原因一：上样量过多，应该减少上样量。对策：加样体积根据样品浓度和凝胶厚度灵活掌握。一般上样体积为10-15µL（即2-10µg蛋白质）。如果样品很稀上样量可以达到100µL。 2.原因二：样品溶解不完全。 对策： （1）样品应该充分溶解：保持各种蛋白质样品和Marker在上样前能够充分溶解，上样前最好离心一下，实在溶解不掉的颗粒就去掉。 (2)可以根据分子量标准的蛋白质试剂盒的要求加入样品溶解液；如果是自行配置标准和未知样品，按照0.5-1.0mg/L样品溶解液。溶解后，将其转移至Eppendorf管，盖上盖子（可以在盖子处加上卡子）后在110度沸水中水浴加热3分钟（可以在薄泡沫塑料板上钻出几个与Eppendorf管直径形同的圆洞，Eppendorf管放下去直到盖子边缘约束不能再往下为止，把薄泡沫塑料板的暴露出Eppendorf管的管体大部分的那一面放入沸水浴锅中，薄泡沫塑料板自然飘在沸水表面，便于取用和加热，也可避免沸水溅起。可以一批对于多个Eppendorf管进行不同时间的沸水浴。不要把Eppendorf管扔进沸水浴锅中，盖子可能会被冲开），而后在室温下冷却待用。如果较长时间不用，则将样品放入零下20度冰箱中储存，需用时在取出后使用前在110度沸水中加热3分钟室温冷却后再上样，以去掉样品蛋白质中的亚稳态聚合体。 （3）改变样品缓冲溶液使得样品能够充分溶解，SDS 用量要充分。 楼主的图看不见，更具楼主的情况加上一条： 3.原因三.原核细胞的表达产物发生了降解或者提前终止了翻译。 |
4楼2013-10-07 21:20:59
5楼2014-06-20 22:25:55
dongmings
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