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fanchuannan

铜虫 (小有名气)

[求助] 最近做原核表达,有些问题求大神帮助啊

本人本科新手一枚,最近用BL21表达一个GST标签的融合蛋白,正在做小量表达,质粒是学长构的。
说一下以前做的大体流程吧:
转化涂板42度过夜,挑菌,5ml LB 37度200r培养6h
提质粒检验发现有质粒
接菌1:1000于40ml LB,37度培养3小时后加IPTG至1mmolperL,28度过夜诱导
收菌3ml加20ul 2Xbuffer,煮十分钟,瞬离,全部上样。。。
结果发现一团糟啊一团糟,电泳条带发现诱导跟没诱导没什么变化,而且条带颜色都很深
自己总结一下可能出错的地方:
1.接菌比例太小,3小时培养后可能还没有到0.6或者连0.4都没到就加IPTG了,所以又到效果不好
2.IPTG浓度加的太多,是不是这次应该做一个梯度来看一看,0.1,0.3,0.6,0.8,1.0
3.上样之前是不是应该先用100ulPBS悬菌然后再加2Xbuffer煮沸
4.煮沸以后是不是应该离心时间长一点然后取上清点样啊?以前点的样在点样孔那里沉积了好多细胞碎片之类的东西

再求做原核表达的大神给点意见啊。。。现在小量的做不好后面的大量培养提蛋白也没法做。。。痛苦中啊

1跟4是加IPTG的,2跟5是未加IPTG的,4跟6是marker

2013-04-30 15.12.28.jpg
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Tomakeeachdaycount。
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feixiang1209

新虫 (初入文坛)

【答案】应助回帖

★ ★ ★
感谢参与,应助指数 +1
fanchuannan(gyesang代发): 金币+1, 鼓励回帖应助! 2013-05-12 22:46:48
fanchuannan: 金币+2, ★★★很有帮助 2013-05-13 23:51:13
过程没什么太大问题,你自己总结的那几点都不会特别的影响实验结果。但是你这点用跑的太差了,跑成这样就算有区别也看不出来了。是不是胶配的不好?下次电压或者电流稍微小点,上样量也有点太多,建议重跑次电泳先看看,起码得条带明显了才能比较。  
如果确实是没有结果的话,可以试试1:40接菌摇俩小时加IPTG,浓度暂时不用变,这是最适表达浓度,如果要可溶表达的话再去摸索浓度,现在得起码保证它表达才行。可以用37度诱导,还是那句话,先确定它表达了之后再摸索如何让它可溶表达。
2楼2013-05-12 19:33:17
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kx444555

至尊木虫 (正式写手)

【答案】应助回帖


感谢参与,应助指数 +1
fanchuannan(gyesang代发): 金币+1, 鼓励回帖应助! 2013-05-12 22:47:02
MAKER跑成这样,明显是胶做的不好,你自己总结的34条都有道理,就按照你说的然后再好好配胶,
祝好运
星陈代谢
3楼2013-05-12 21:40:08
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peng5053

银虫 (正式写手)

Dr.


fanchuannan(gyesang代发): 金币+1, 鼓励回帖应助! 2013-05-12 22:47:10
首先可以肯定的是,你的样品太浓,而导致在跑胶的过程中向两边挤压而导致你中间的marker变的很窄。建议:1;如你总结的3.4在做一次。
  2. 可以破碎细菌,如超声波破碎,在离心,这样跑出来的胶会好看些。
从你的图中隐约可以看出加IPTG的实验组对比control,有一条带,疑似你要表达的蛋白质。
多点思维,多点idea
4楼2013-05-12 21:50:30
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cicelyzh

铁杆木虫 (职业作家)

【答案】应助回帖

感谢参与,应助指数 +1
接菌的比例是有些小,不过在加IPTG诱导前你以测下OD确定菌的状态。而且,你的上样量太大。此外,你确定样品煮过离心后没有发粘?一般煮完的样品都是离心5-10分钟的。
5楼2013-05-12 23:02:25
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野草99688

银虫 (小有名气)

可以肯定的说你的胶配的有问题!不知道你跑的目标蛋白的分子量是多大!可以根据分子量大小配置胶浓度!还有就是前面说的,样品太浓,导致条带特别不清晰!脱色时间把握的也不是很好,考马斯亮蓝颜色太重!至于你提出的前面几个问题!都是关键因素!你说的在理!按照你说的做就可以
6楼2013-05-14 08:35:47
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安小安4302

铁虫 (正式写手)

楼主,实验做出来了吗?我有同样的问题,不知道您解决了没?
不要因为走的太远,以至于忘记了为什么出发!
7楼2013-07-30 16:23:16
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