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hraikeyan

金虫 (小有名气)

[求助] 蛋白破碎后,上清的活性很低

各位好心人,我最近在做蛋白表达。全细胞的酶活很高,用超声破碎后,破碎后上清活性很低,但沉淀的活性很高。蛋白电泳结果也是一样的,上清的条带很暗,沉淀很粗。我想应该是破碎不完全吧。我的破碎条件是这样的:破碎1s,暂停2s。总共这样循环破1h,功率45%。
各位做蛋白表达的同志们,能否给我些建议,我想我这应该不是形成包涵体吧,但是都破碎了1h了,沉淀中还是有好多目的蛋白。
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nothing isimpossible
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凌波丽

专家顾问 (知名作家)

【答案】应助回帖

就是一般蛋白质的分离程序:粉碎细胞,离心,盐析,有机试剂沉淀。后是离子交换层析,疏水层析,电泳,分子筛层析,亲和层系等。
5楼2013-05-07 22:21:55
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凌波丽

专家顾问 (知名作家)

【答案】应助回帖

★
感谢参与,应助指数 +1
myprayer: 金币+1, 赠人玫瑰手有余香,鼓励应助,分子生物版块期待你的更多精彩。同样期待你更详细的应助指导。 2013-05-08 09:11:58
"蛋白电泳结果也是一样的,上清的条带很暗,沉淀很粗。"应该是形成了包涵体。但沉淀的活性很高,说明沉淀里有很多目的蛋白质不是包涵体,因为包涵体是变性的聚集体,一般为固体形态,没有生物活性。
2楼2013-05-07 21:55:22
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凌波丽

专家顾问 (知名作家)

【答案】应助回帖

我想可能是酶与某些其他成分形成了共聚物,但是没有聚集成为固体状态,或者说类似于固定化酶的形态,所以目的酶还是有生物活性。
3楼2013-05-07 21:57:30
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凌波丽

专家顾问 (知名作家)

【答案】应助回帖

★
myprayer: 金币+1, 赠人玫瑰手有余香,鼓励应助,分子生物版块期待你的更多精彩。同样期待你更详细的应助指导。 2013-05-08 09:12:08
既然不清楚“固定化”酶本身与非酶的介质之间的链接到底是什么?那么可以先用破坏非共价键的把“固定化”酶从介质上解脱下来。比如用加入一些表面活性剂破坏“固定化”酶本身与非酶的介质之间的疏水相互作用,然后离心试试看。比如可以用低浓度的去污剂(浓度不大于2%的Triton X-100或浓度不大于0.5%SDS)洗涤样品(上样洗脱时);增加洗脱液的盐浓度(氯化钠溶液低于2mol/L);上样液里加入30%-50%的甘油,已减弱疏水相互作用,然后过层析住加以分离;或者用硫酸铵沉淀蛋白质-----分离蛋白质与生物大分子,而后除去硫酸铵再用用层析;如果酶石墨蛋白质则可用丙酮分级分离;另外疏水层析和离子交换树脂也可以用上;实在分离不开就用SDS-PAGE电泳分离,然后回收凝胶中 的蛋白质再进行复性。

  
4楼2013-05-07 22:09:57
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