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若鱼@@

新虫 (初入文坛)

[求助] 95KD蛋白纯化求助!!!!!!!!

本人做了一个95KD的聚合酶蛋白,表达量蛮小,纯化过程中遇到了困难。分别用了20mM、50mM和250mM的咪唑溶液进行洗脱,发现在20和50mM低浓度洗脱时候,杂蛋白洗下来很少,250mM咪唑却把大量目的蛋白和杂蛋白一起洗脱下来了,给纯化造成了极大的困难。小弟想请教下各位大侠有什么高招给解决下。

SDS图谱
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radium4046

铁虫 (初入文坛)

lysis buffer直接加20mM imidazole,有效避免更多杂蛋白结合Ni柱
在50~250mM之间多设几个梯度
要不直接用AKTA拉个线性好了 最直接
7楼2012-05-25 15:36:22
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lihuan0525

金虫 (职业作家)

【答案】应助回帖

感谢参与,应助指数 +1
尝试其他浓度或者改变PH值,实验只能耐着性子试啊
2楼2012-05-22 17:50:07
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dshlove

木虫 (正式写手)

【答案】应助回帖

★ ★ ★ ★ ★ ★ ★
感谢参与,应助指数 +1
silicare: 金币+6, BioEPI+1, 应助指数+1, 有道理 2012-05-22 18:00:54
若鱼@@: 金币+1, ★★★很有帮助 2012-05-23 09:09:52
建议你先用Imidazole拉个线性试试,最佳浓度能洗下杂蛋白。再用阶梯去洗。不过这只是摸条件用,这样目的蛋白损失会很大。最好的是阶梯洗脱。
对于你这张蛋白胶,不知道你洗杂的量。
我看50mM时候你的目的蛋白就已经开始下来了,而后面你直接跳到250mM去elute了,我个人觉得很不妥。
我给你个方案试试:先在50mM之前用低浓度Imidazole,比如30mM或者40mM大量洗洗,5ml柱子建议至少洗200ml。因为你胶上看20mM已经很好的除杂了。其次,50mM到250mM之间多设几个阶梯试试,75mM,100mM,150mM,200mM都要试试,见峰收就行。这样保证会有一个浓度下目的蛋白会很多。通过这些步骤最后的250mM洗下的就可要可不要了。
这样选择纯一点去过Q或者S,或者HP就能进一步纯化了。
希望能帮到你。可以互相交流。
3楼2012-05-22 17:51:58
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silicare

荣誉版主 (文坛精英)

合伙创业版兼职版主

优秀版主

【答案】应助回帖

感谢参与,应助指数 +1
还有就是你的电泳没有marker,哪个才是你的目的条带。
最上边的条带很粗,后边都有洗脱掉,你到底洗脱了多大的体积?
4楼2012-05-22 18:02:23
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