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小木虫论坛-学术科研互动平台 » 生物医药区 » 生物科学 » 95KD蛋白纯化求助！！！！！！！！
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若鱼@@

新虫 (初入文坛)

[求助] 95KD蛋白纯化求助！！！！！！！！

本人做了一个95KD的聚合酶蛋白，表达量蛮小，纯化过程中遇到了困难。分别用了20mM、50mM和250mM的咪唑溶液进行洗脱，发现在20和50mM低浓度洗脱时候，杂蛋白洗下来很少，250mM咪唑却把大量目的蛋白和杂蛋白一起洗脱下来了，给纯化造成了极大的困难。小弟想请教下各位大侠有什么高招给解决下。

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1楼 2012-05-22 16:54:48
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radium4046

铁虫 (初入文坛)
lysis buffer直接加20mM imidazole，有效避免更多杂蛋白结合Ni柱
在50~250mM之间多设几个梯度
要不直接用AKTA拉个线性好了 最直接
赞一下(1人) 回复此楼
7楼2012-05-25 15:36:22
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lihuan0525

金虫 (职业作家)

【答案】应助回帖

感谢参与，应助指数 +1
尝试其他浓度或者改变PH值，实验只能耐着性子试啊
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2楼2012-05-22 17:50:07
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dshlove

木虫 (正式写手)

【答案】应助回帖

★ ★ ★ ★ ★ ★ ★
感谢参与，应助指数 +1
silicare: 金币+6, BioEPI+1, 应助指数+1, 有道理 2012-05-22 18:00:54
若鱼@@: 金币+1, ★★★很有帮助 2012-05-23 09:09:52
建议你先用Imidazole拉个线性试试，最佳浓度能洗下杂蛋白。再用阶梯去洗。不过这只是摸条件用，这样目的蛋白损失会很大。最好的是阶梯洗脱。
对于你这张蛋白胶，不知道你洗杂的量。
我看50mM时候你的目的蛋白就已经开始下来了，而后面你直接跳到250mM去elute了，我个人觉得很不妥。
我给你个方案试试：先在50mM之前用低浓度Imidazole，比如30mM或者40mM大量洗洗，5ml柱子建议至少洗200ml。因为你胶上看20mM已经很好的除杂了。其次，50mM到250mM之间多设几个阶梯试试，75mM，100mM，150mM，200mM都要试试，见峰收就行。这样保证会有一个浓度下目的蛋白会很多。通过这些步骤最后的250mM洗下的就可要可不要了。
这样选择纯一点去过Q或者S，或者HP就能进一步纯化了。
希望能帮到你。可以互相交流。
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3楼2012-05-22 17:51:58
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silicare

荣誉版主 (文坛精英)

合伙创业版兼职版主

优秀版主

【答案】应助回帖

感谢参与，应助指数 +1
还有就是你的电泳没有marker，哪个才是你的目的条带。
最上边的条带很粗，后边都有洗脱掉，你到底洗脱了多大的体积？
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4楼2012-05-22 18:02:23
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