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汕头大学海洋科学接受调剂
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bear0329

金虫 (正式写手)

[求助] 真菌ITS序列PCR扩增 求助

提取到土壤DNA后进行真菌ITS序列PCR扩增,用的引物是ITS1F/ITS4R
做了温度梯度PCR,退火温度从45℃——65℃,检测结果显示,非特异性条带多,目的产物产量不高,见下图
该如何优化PCR体系和程序?请各位虫友提供宝贵意见,先谢谢啦!
PCR体系:
总体积               30
10×buffer                      3
dNTP                             1.5
引物                  1
taq EX                             0.3
BSA                                 0.2
模板                   1
水                     22

程序:
94℃             4min
94℃             1min
45℃~65℃   45s
72℃             90s
72℃             10min
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土壤真菌 【分子生物】EPI帖

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以马内利!
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bear0329

金虫 (正式写手)

引用回帖:
Originally posted by 冼亮淀粉酶 at 2011-07-04 19:06:39:
楼主提取土壤样品的DNA,里面的微生物是非常丰富的,当然也是含有多种真菌的,使用真菌通用引物来扩增,照理说应该得到多个扩增产物,他们的ITS的长度相互之间不会变化太大,所以跑DNA电泳的时候可能会在相近的地 ...

谢谢你啊,我是做一个多态性分析的,我要得到ITS序列后去酶切,然后进行多态性分析,我是不是要把所有扩增出的条带回收后分析呢?
以马内利!
5楼2011-07-04 22:03:25
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beautybanana

木虫 (著名写手)

【答案】应助回帖

★ ★ ★ ★ ★
dhd997(金币+5, EPI+1): 2011-07-04 18:03:59
bear0329(金币+2): 我是做多态性分析的,不是做鉴定,里面应该有很多的ITS序列,谢谢啊 2011-07-04 22:01:24
bear0329(金币+1): 2011-07-06 15:13:16
你是不是要做菌种的ITS序列的鉴定呢?如果是的话,我把我做过的告诉你,如果不是的就算了哇~
ITS4:5’-TCC TCC GCT TAT TGA TAT GC-3’
ITS5: 5’-GGA AGT AAA AGT CGT AAC AAG G-3’
PCR Amplification reaction system(50μl)
ddH2O                        38.5μl
10×buffer with MgCl2        5.0μl
dNTPs(2.5mM)        1.0μl
Primer5’                        2.0μl
Primer3’                        2.0μl
DNA template        1.0μl
Taq DNA ploymerase(5U/μl)        0.5μl

反应程序如下:
94℃  for   5 minutes   denaturalization
94℃  for  45 seconds   denaturation
52℃  for  45 seconds   annealing
72℃  for   1min30sec   extension  2  35
72℃  for  10 minutes  final extension
大概500bp左右
3楼2011-07-04 16:17:18
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冼亮淀粉酶

专家顾问 (知名作家)

生物大分子降解酶

★ ★ ★ ★ ★
西瓜(金币+5): 鼓励 2011-07-05 00:31:55
楼主提取土壤样品的DNA,里面的微生物是非常丰富的,当然也是含有多种真菌的,使用真菌通用引物来扩增,照理说应该得到多个扩增产物,他们的ITS的长度相互之间不会变化太大,所以跑DNA电泳的时候可能会在相近的地方有多条带。(现在论坛不能上传和下载文件,连带着看不到楼主贴出来的图。)所以不存在非特异性扩增的说法。理应是多条带的,只得到一条带才奇怪,无论是做什么退火温度梯度,结果都不会有实质性改变。

你的PCR体系总体积是29微升,引物只有1微升,是不是想写正反向引物各1微升?体系和我用的一样,程序也没有任何问题,除了退火温度之外,其余的和我的一样。

beautybanana用的是ITS5,其实也没问题,大同小异。ITS1和5都是在18S上的,ITS4在28S上,ITS1和4或者5和4都可以用,扩增得到的可变区都是完整的两个。至于长度就难说了,各种不同种属的真菌得到的长度可能会不同,不局限于500bp。
流星来时我许了个愿,愿我有吃有喝还有舒服的猪圈。讨厌发帖前不搜索论坛重复发帖和仅把论坛当解决问题工具,久不看论坛一来就提问者,宁弃EPI和VIP也不回帖。
4楼2011-07-04 19:06:39
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冼亮淀粉酶

专家顾问 (知名作家)

生物大分子降解酶

【答案】应助回帖

★ ★ ★ ★ ★
西瓜(金币+5, EPI+1): 厉害厉害! 2011-07-05 00:31:39
bear0329(金币+2): 谢谢你的建议啊~ 2011-07-05 07:57:12
bear0329(金币+1): 2011-07-06 15:13:32
被我猜中了,你发帖的时候我就在想你的意图,现在果然没猜错。

由于你的序列长度相差可能不大,跑电泳极难分得开,所以不能回收。再说了,即使是分得很开,也存在两个菌株的扩增产物长度完全相同的隐患,所以是得不到单一产物的。

但是你可以将扩增产物都回收(保持产物的多样性才能达到你分析多样性的目的),全部与载体连接,得到一批含有外源片段的克隆子,转化载体到宿主内(一般选用大肠杆菌),涂板得到单菌落,这就是可能含有各不相同的ITS序列的克隆子了,将这些克隆子分别培养提取质粒送测序,就能得到很多菌株的ITS序列,进行多样性分析了。

当然这会耗费一笔钱,但这是必须付出的代价。
流星来时我许了个愿,愿我有吃有喝还有舒服的猪圈。讨厌发帖前不搜索论坛重复发帖和仅把论坛当解决问题工具,久不看论坛一来就提问者,宁弃EPI和VIP也不回帖。
6楼2011-07-04 23:20:18
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