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lhwei1987铁杆木虫 (正式写手)
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[交流]
【求助/交流】请教个关于inverse PCR的问题已有6人参与
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| 用cDNA环化的方法做IPCR ,使用RNA Lagise 加25%PEG18h环化,环化后立即PCR总是可以出带,但是-20过夜再进行PCR的时候就一直得不到任何条带,不知道怎么回事,哪位可以给分析一下,谢谢!! |
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lhwei1987
铁杆木虫 (正式写手)
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dhd997(金币+2):感谢回帖交流 2010-11-21 10:09:25
lstt09nk(金币+3):在自己的帖子里帮助别人~ 2010-11-26 09:37:00
dhd997(金币+2):感谢回帖交流 2010-11-21 10:09:25
lstt09nk(金币+3):在自己的帖子里帮助别人~ 2010-11-26 09:37:00
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我的过程相对简单,用cDNA,省了酶切的部分,如果是用DNA的话,我这有个资料,也是小木虫看到的:反向PCR (inverse-PCR)实验步骤 inverse-PCR是克隆插入片段侧翼序列非常有效的方法。通常采用的Tail-PCR假阳性太多,而Inverse-PCR一般只要有特异条带,基本上就是目的片段。 基本步骤如下: 1、反向PCR(Inverse PCR)原理:反向PCR是克隆T-DNA插入位点侧翼DNA序列非常有效的方法。 a. 选择合适的限制性内切酶位点。并在T-DNA的边界(左边界、右边界均可)和酶切位点附近设计引物P1、P2; b. 回收DNA,T4连接酶连接,使酶切后的DNA片段环化; c. 回收连接后的DNA,用引物P1、P2做PCR,就可扩增到两端为T-DNA插入序列,中间为侧翼序列的片段。 2、限制性内切酶消化:选择合适的限制性内切酶,基因组一定要切成弥散性的条带。在酶切之前,应对基因组DNA定量。 根据T-DNA的左边界序列选择合适的酶切位点EcoRI,BamHI和HindIII/PstI,并在酶切位点上游附近设计引物Z1,Z2,Z3和Z4,然后用这些内切酶分别消化基因组DNA,酶切体系如下: Buffer for EcoR I 2μl Genomic DNA 3μl EcoR I 0.5μl (10u/μl) ddH2O 14.5 μl 20μl 37度 过夜,电泳检测酶切效果。 3、回收DNA ① 将酶切产物转到1.5ml离心管中,用ddH2O洗涤干净,并稀释到250μl; ② 加入等体积的酚和氯仿(V:V=1:1),涡旋混匀,室温静置1min; ③ 最大速度(13, 000 rpm)离心1min; ④ 将上清移到另一管中,加入等体积的氯仿,涡旋混匀,室温静置1min; ⑤ 最大速度(13, 000 rpm)离心2min; ⑥ 将上清移到另一管中,加入2.5倍体积的-20℃预冷的无水乙醇,0.1倍体积的3M 乙酸钠(pH=5.2),轻轻振荡混匀,室温静置5min; ⑦ 4℃最大速度(13, 000 rpm)离心10~15min; ⑧ 弃上清,尽量除去管壁上的液体; ⑨ 加入1ml -20℃预冷的70%乙醇,轻轻颠倒几次。最大速度(13, 000 rpm)离心5min; ⑩ 除去乙醇,在超净台上平放,将管壁上的乙醇挥发掉,20~40μl ddH2O溶解。-20℃保存。 4、连接。体系如下: DNA 2μl 10×buffer 10μl T4 ligase 1μl ddH2O 87μl 100μl 12-14℃ overnight 连接体系比较大,而DNA含量比较低,不需加入PEG4000,这样可以促进分子内的连接,减少分子间的连接。试验中我们采取蹇文婴等(2002)的方法(12-14℃连接48h)。连接完成后,65℃ 水浴10min灭活。按上述3.抽提回收,溶解于40μl ddH2O中。 然后就可以用回收的链接片段做PCR了。 本文来自: 小木虫论坛 http://muchong.com/bbs/viewthread.php?tid=2109736 |
7楼2010-11-21 09:26:25
3楼2010-11-20 16:13:02
4楼2010-11-20 23:50:30
5楼2010-11-21 03:51:56













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