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【求助/交流】SP柱子纯化蛋白,蛋白结合后,用2M NacL都没有洗脱下来,该怎么办?
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【求助/交流】SP柱子纯化蛋白,蛋白结合后,用2M NacL都没有洗脱下来,该怎么办?
已有4人参与
>有一蛋白蛋白等电点6.8,一开始在PH=4.0的溶液中,现在遇到一个问题,用B相(100%),NaCL的浓度都达到2 M了,洗脱下一部分蛋白,但是从上样的蛋白量来看,蛋白都已经挂柱子了,穿透里面没有蛋白,但是洗脱下来的蛋白蛮少,断定很多蛋白还是挂在柱子上的,现在要用什么方法把其余的蛋白洗脱下来呢?
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2010-04-28 19:06:38
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lstt09nk(金币+1):欢迎多多交流~~ 2010-04-29 15:38
结合力太强了,不要用SP这种强阳离子交换柱了,换成弱的试试看。比如CM
要不就提高一些你上样Buffer的pH试试。
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2010-04-29 12:25:56
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现在用8M尿素洗脱,蛋白也没洗脱下来,用4.5 M的盐酸胍洗脱,出现一个峰,虽然峰高还可以,但是电泳分析发现没有目的蛋白,那目的蛋白跑那里去了?
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2010-05-04 09:54:25
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+0.5
):给个红包,谢谢回帖交流
lstt09nk(金币+1):感谢交流~~ 2010-05-04 12:28
SP柱结合力太强,大部分结合到柱上,是洗不下来的,一般我们都不太爱用,都用弱的CM柱或别的,用NAOH或HCL应该能洗下来,但有活性要求的就算洗下来也没用了
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2010-05-04 11:18:21
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小木虫: 金币+0.5, 给个红包,谢谢回帖
SP是一种强阳离子交换柱,你上样时 用的缓冲溶液的pH是肯定小于目的蛋白质的pI值的,以便让你的目的蛋白质带上正电荷,也就能够挂在强阳离子交换柱的磺丙基基团上了。用提高离子强度,无法解离目的蛋白质与SP的非共价相互作用,那么我们为什么不能用pH大目的蛋白质的pI值的缓冲溶液去洗脱哪。这是可以配合2M氯化钠溶液同时洗脱,这是至少一部分挂柱的目的蛋白质的电荷会在pH大目的蛋白质的pI值的缓冲溶液的环境中变为负电荷而从阳离子层析柱上掉下来。
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2015-06-18 14:25:38
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