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如何做一个基因的荧光定量pcr,从目的基因的查找,引物设计,到做一个完整的荧光定量pcr具体的步骤。万分感谢 。跪求。 发自小木虫Android客户端 |
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莫等闲111
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1、总RNA抽提(枪头和离心管均经过湿热灭菌,无RNA酶) 1)取匀浆器,加入1ml的Trizol Reagent,置冰上预冷。 2)取100mg组织,加入到匀浆器中。 3)充分研磨直至无可见组织块。 4)13000g离心10min取上清。 5)加入250 μl三氯甲烷,颠倒离心管15s,充分混匀,静置3min。 6)4℃下13000g离心8min。 7)将上清转移到一新的离心管中,加入0.8倍体积的异丙醇,颠倒混匀。 8)-20℃放置15min。 9)4℃下13000g离心10min,管底的白色沉淀即为RNA。 10)吸除液体,加入75%乙醇1.5ml洗涤沉淀。 11)4℃下13000g离心5min。 12)将液体吸除干净,将离心管置于超净台上吹3min。 13)加入20μl无RNA酶的水溶解RNA。 14)55℃孵育5min。 2、反转录(枪头和PCR均经过湿热灭菌,无RNA酶) 1)取一PCR管,加入含2μg RNA的溶液。 2)加入1μl oligo(dT)15。 3)用无核糖核酸酶的去离子水补足至12μl。 4)于PCR仪上70℃保温5min,迅速置冰上冷却。 5)依次加入4μl 5×buffer,2μl 10mM dNTPs,1μl RNA inhibitor和1μl 反转录酶,用枪抽吸混匀。 6)于PCR仪上42℃保温60min,结束后80℃保温5min灭活反转录酶。 3、定量PCR 1)取0.2ml PCR管,配制如下反应体系,每个反转录产物配制3管。 2× qPCR Mix 12.5μl 7.5μM基因引物 2.0μl 反转录产物 2.5μl ddH2O 8.0μl 2)取0.2ml PCR管,配制如下反应体系,每个反转录产物配制3管。 2×qPCR Mix 12.5μl 7.5μM内参引物 2.0μl 反转录产物 2.5μl ddH2O 8.0μl 3)PCR扩增 预变性 95℃,10min 循环(40次) 95℃,15s→60℃,60s 溶解曲线 75℃→95℃,每20s升温1℃ 4、结果处理 ΔΔCT法: A=CT(目的基因,待测样本)- CT(内标基因,待测样本) B=CT(目的基因,对照样本)- CT(内标基因,对照样本) K=A-B 表达倍数=2-K 注意事项 1、长度:15—30bp。 2、G十c含量:应在40%一60%之间。 3、碱基分布的随机性 4、引物自身:最好不要含有自身互补序列,否则会形成发夹样二级结构。 5、引物之间:两个引物之间不应有多于4个的互补或同源碱基,不然会形成引物二聚体,尤应避免3’端的互补重叠。 6、上下游引物的互补性:一个引物的3‘末端序列不允许结合到另一个引物的任何位点上。 7、3’末端:如果可能的话,每个引物的3‘末端碱基应为G或C。 8、设计RT-PCR的引物时,上下游引物要跨内含子,以消除基因组DNA的干扰。 9、引物设计好后再NCBI上进行序列比对,检查是否可能有错配产物扩增。 10、引物设计要注意种属。 |

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莫等闲111
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