aptamer与靶标的结合条件，主要取决于aptamer的筛选条件。对于一些用得比较多的aptamer，有不少参考文献。当然，现在有的文献比较水，要注意杂志的档次和文章的作者。
抗原-抗体的结合有前带后带的说法，aptamer似乎没有。
aptamer与靶标的结合，与aptamer是否被固定有关。固定化的aptamer，一定要注意手臂的设计。

个人感觉固定化的aptamer的手臂是为了降低位阻。。。aptamer在使用前变性是为了aptamer呈现链状而不是相互纠缠在一起。也可以说是为了增加aptamer与target的识别机会。至于离子强度，温度和pH值在一定程度上会影响aptamer的选择性和灵敏度，这个要靠实验优化，或者参考权威文献，个人觉得一般情况下和筛选这种aptamer的条件是类似的。

实验体系的设计不同，条件有一些差别。某些文献的条件是不可信的。你是固定化检测，还是在均相检测？如果不担心泄密，可给出一些具体设计，这样能更有针对性。

适配体aptamer 与分析物有效结合的有效结合取决于它们之间本身的亲和性（例如解离常数或结合常数）；以及所用的buffer 种类 pH 盐离子浓度等外部条件。
亲和性可以通过文献所报道的获得，像ATP与其DNA aptamer解离常数在微摩尔级，所以要想观察到明显的结合，ATP需要在毫摩尔级的浓度。VEGF与aptamer亲和性在100纳摩尔左右，VEGF的浓度可能要到微摩尔级了。此外，VEGF是蛋白质，需要防止其变性。
实验缓冲条件可以参考其原始文献，即楼上所提到的筛选条件。
如果aptamer是固定在表面上，可能还会在很大程度上减弱其与分析物的亲和性。影响的减弱在于连接臂的设计、在表面固定的密度等。