求助关于pet28a的宿主问题
实验室现有JM109,DH5a,B21(DE3),TOP10等4种感受态细胞。按理说最好是用B21(DE3),但是其转化效果最差。推测酶切和连接都没有问题但就是长不出克隆。转化空载时用1ul的载体转100ul感受态可以长出50个左右的克隆。但连接产物就是不行。
想请教诸位的是,其他的几种感受态有哪一种可以比较近似地替代B21(DE3)?
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实验室现有JM109,DH5a,B21(DE3),TOP10等4种感受态细胞。按理说最好是用B21(DE3),但是其转化效果最差。推测酶切和连接都没有问题但就是长不出克隆。转化空载时用1ul的载体转100ul感受态可以长出50个左右的克隆。但连接产物就是不行。
想请教诸位的是,其他的几种感受态有哪一种可以比较近似地替代B21(DE3)?
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基因操作在DH5里面做(酶连物转化)
然后再提质粒,转BL21 一般都这么做比较好
我们实验室也在用pET28a 也是先在DH5α里扩增重组质粒 然后在转到DE3中表达的
如果BL21不行的话 lz可以试试Tuner(DE3)
我做实验的时候基本上是直接转化到BL21的,用CaCl2做感受态的时候过夜,5%转接2h,下面一样,感受效率挺高的。当然,我这样做的时候插入序列最长只有1700bp。其它大片段我还是用克隆+亚克隆的方法做的。
[ Last edited by cpu2004 on 2009-6-5 at 22:17 ]
先把pET28a转到DH5a里面,质粒鉴定无误后抽提质粒再转BL21表达蛋白
一般是先转DH5a,不要先转BL21,不太好的,呵呵
我们实验室一般用DH5a,效果还不错,不过操作也比较重要
p28a和bl21(DE3)是我们实验室常用的表达载体和宿主菌,感觉重组p28转化BL21(de3)效果还是很好的。
如果你的感受态不是买的而是以前做的保存下来的,建议自己重新做感受态试试,一般做好感受态4度保存8-10小时后转化效果最好。
你做完连接一定要先转化克隆菌,不要直接转表达菌,很难长出来。在克隆菌中鉴定阅读框正确后在转化表达菌。
虽然使用的pET28a同时拥有T7启动子和lac双重控制,但是还是会有些本底表达,因为平常使用的蛋白胨中都还有及少量的乳糖,这样就会开启启动子,是目的基因表达。这样细胞很有可能受不了。
而你使用质粒转化转化效率要比连接产物高很多。
曾经我想过要在培养基中加入0.5%的葡萄糖抑制本底表达,这样连接产物直接转表达菌可能会长出来,只是想过还未验证过,