先离心，然后用ddH2O溶解。引物合成报告单上有一项“1 OD=0.0048（比如）”，如果给你的是每管1 OD，就加48μl水溶解，使用时再稀释10倍就可以了。

溶解引物:

首先需要离心,然后慢慢打开管盖,溶解时请加需要量的水后盖上盖子, 上下充分震荡10min
1． Oligo DNA是以OD260单位来计算的，这是指在1ml体积1cm光程标准比色皿中，260nm波长下吸光度为1A260的Oligo溶液定义为1 OD260单位，根据此定义，1 OD260单位相当于33μg的Oligo DNA，您可以根据此数据和您的Oligo DNA分子量，计算得到摩尔数以计算不同摩尔浓度的溶液。

2． 引物序列的分子量计算公式如下：

MW=（A碱基数×312）+（C碱基数×288）+（G碱基数×328）+（T碱基数×303）-61

例如：引物TGGGCGGCGGTTGGTGTTACG   A=1  C=3  G=11  T=6

MW=（1×312）+（3×328）+（6×303）-61=6541

3． Oligo DNA的分子量也可以用以下近似方法计算：Oligo DNA中的每个脱氧核苷酸碱基的平均分子量近似为324.5，则一条Oligo DNA的分子量=碱基数×324.5。

例：您得到一管标为5 OD260的20 mer Oligo DNA

分子量=20×324.5=6490

质量数=5×33=165μg

摩尔数=165/6490=0.025μmol=25nmol

若加灭菌双蒸水400μl溶解，则浓度为25nmol/400μl=62.5μM

4． 装有引物的eppendorf管一般保存于-20℃，临用前稀释。

5． 由于Oligo DNA呈很轻的干膜状附在管壁上，打开时极易散失，所以打开管子前请先离心10,000rpm，1min，然后再慢慢打开管盖。

6． 在装有引物的eppendorf管内加入100-500μl双蒸水，盖上管盖，充分上下振荡5-10分钟，再次离心10,000rpm，1min。

7． 计算原引物管primer的浓度（必要时测OD260核对厂家提供引物量是否正确）。

8． 计算并将应用primer稀释为10pmol/μl。

9． 标明原引物管、应用引物管、稀释方法，置-20℃保存。，

离心后加入报告单上的说明配成100ppmol
用时稀释少量10ppmol

1OD的一般你加200ul灭菌水,50ul体系,你加2ul,25ul你加1ul就行了,尽信书不如无书,我原来就是严格按照书上说的来设计引物呀,其实没必要,经验也很重要,科学也是重要的,关键是如何具体问题具体利用,

楼上的说法我不赞同哈，你说的可能是一般长度的引物咯。我的引物就很长，有40或60 多bp的，每次合成了就只能加很少的水，和我17，20bp的差异很大呀！