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求大神指点,我的基因工程菌是不是退化了?
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师姐毕业了,老师让我测定她留下来的,一株导入脂肪酶的酿酒酵母的酶活。参考学姐的方法,我从-20℃冰箱里取出甘油保藏的菌种,在YPD固体培养基中涂布接种,没有加选择压力氨苄青霉素,培养了三天,37℃,观察到固体培养基均匀地长了两种不同的菌落, ,我以为是杂菌,就用YPD选择培养基,加入选择压力--氨苄青霉素,分离出了目的菌种。然后在固体培养基中连续传代三次,再接种至种子培养基中液体培养(摇床温度30℃,转速200rmp/min),传代三次,每12小时传一代。之所以在液体培养基中传代三次是因为学姐说要多传代几次,这样就可以使得菌种的活力高一些,哎,可我不知道这样对不对。然后,我就将得到的种子培养液接种到了诱导培养基中,所测酶活没有师姐之前测的高,她是70u/mg.min,我是20u/mg.min。我想验证一下诱导培养基没有染菌,于是又用了不加氨苄青霉素的YPD选择培养基(培养条件与之前相同)涂布了诱导培养基里培养出来的菌种,结果发现,菌落形态和之前的发生了比较大的变化,看上去是两种不同的菌。我觉得酶活降低和菌的这些变化有关。 请教各位大神,这到底是怎么回事,是菌种退化了呢,还是我的操作步骤有什么不妥。我刚刚学基因工程,实验室没有人做,只能自己摸索。恳求大神给一些建议! |
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。酵母为啥要用37度培养了。负20度保存的菌种稳定期至多3个月。看你师姐有没有保存质粒,重新转化下,若没有,就提下质粒,重新转化下。另外克隆最好保存到负70度可能比较稳定,或者负44度,负20度只能临时保存,另外保存克隆菌时尽量提出质粒,质粒和菌同时保存。克隆菌会变异,但质粒不会,即使菌出问题,然后重新转化下就好了。另外测酶活不一样也很正常,即使是同一个菌,同样的培养方式,用药瓶培养培养出菌的状态也有差别的,比如接种量,种子的活力,等等都会有影响。祝实验顺利。