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hubinghello

金虫 (小有名气)

[交流] 大家是怎么稀释引物的已有6人参与

各位童鞋,你们新拿到的引物粉末一般离心多少速度多长时间?加水稀释后,又旋涡震荡多长时间呢?时间久了会有什么影响吗
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去爱吧,像不曾爱过一样;跳舞吧,像没有人观看一样;唱歌吧,像没有人聆听一样;生活吧,像每天都是世界末日一样;赚钱吧,像不是为了钱一样。
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hubinghello

金虫 (小有名气)

引用回帖:
4楼: Originally posted by 通缉要饭 at 2012-12-07 09:20:35
引物合成报告单
分子量Molecular Weight(MW)
①分子量MW=碱基个数×324.5(每个核苷酸的平均分子量)
②分子量MW=(A×313.21)+( G×329.21)+( C×289.19)+(T×304.20)-61.97
注:A、T、G、C分别代表引物中A、 ...

师兄
去爱吧,像不曾爱过一样;跳舞吧,像没有人观看一样;唱歌吧,像没有人聆听一样;生活吧,像每天都是世界末日一样;赚钱吧,像不是为了钱一样。
5楼2013-01-11 13:47:32
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查看全部 8 个回答

dajiong

金虫 (正式写手)


小木虫: 金币+0.5, 给个红包,谢谢回帖
没啥影响的。离心离个半分钟就行,振荡十几秒吧。溶的很快的。
哦也
2楼2012-12-06 16:38:45
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倾听世界0721

金虫 (小有名气)


小木虫: 金币+0.5, 给个红包,谢谢回帖
12000rpm离心5min,离心后能看到管底的DNA,加水后静置2-3min可以继续稀释。
3楼2012-12-06 22:39:00
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通缉要饭

金虫 (著名写手)

★ ★ ★
小木虫: 金币+0.5, 给个红包,谢谢回帖
kx444555: 金币+2, 鼓励交流 2012-12-07 12:04:56
gyesang: 回帖置顶 2012-12-08 21:17:27
引物合成报告单
分子量Molecular Weight(MW)
①分子量MW=碱基个数×324.5(每个核苷酸的平均分子量)
②分子量MW=(A×313.21)+( G×329.21)+( C×289.19)+(T×304.20)-61.97
注:A、T、G、C分别代表引物中A、T、G、C四种碱基的个数

熔解温度Melting Temperature(Tm)
是指DNA的双螺旋结构降解一半时的温度。不同序列的DNA,Tm值不同。Tm值与GC含量和碱基数量成正比关系。引物单上会提供一个高盐浓度的Tm值和一个低盐浓度的Tm值,是公司让我们在摸索自己的体系的Tm值时有一个大概的范围吧。不过不同生物公司计算Tm值得方法都不一样,要做PCR可以按照后一个,不过最好是按照自己用软件设计的Tm-(5-10度)来进行PCR。当上下游引物Tm值不同时按照低的引物的Tm值设计退火温度。

吸光值Optical Density(OD)
表示被检测物吸收掉的光密度。由于核酸在260 nm附近有强吸收,因此常根据此性质,用紫外分光光度计测定核酸溶液在260 nm的吸光度值,据此对核酸进行定量,用OD值来表示。1 OD是指:置于光路长度为1 cm的比色皿中的DNA/RNA溶液,如果其在260 nm处的吸光度值为1,则称1 ml该溶液中溶解的DNA/RNA的量为1 OD。1个OD值的合成DNA/RNA的质量约为33 μg。

n moles per OD
表示每个OD值的引物中含有X n moles。用于引物稀释时计算引物的终浓度。
①引物浓度μM(μ mol / L)= n / V = [ X n moles / 1000 ] μ mol / [ VμL / 1000000 ] L
②引物浓度μM(μ mol / L)=(OD值×33 μg / MW)/ [ VμL / 1000000 ] L
注:V表示加入的无菌TE(pH8.0)或者双蒸水(最好要用调整过pH8.0值的双蒸水)
简单的说:若n moles per OD = X,要稀释成10 μM 的终浓度,需要加入的TE或者双蒸水的体积为100X(μL)。

纯化方式Purifaction
表示引物的纯化方式。一般的引物的纯化方式有如下几种:
①C18柱脱盐:又称简易反相柱,它对DNA有特异性的吸附,可以被有机溶剂溶解洗脱,但不会被水洗脱,所以能有效地去除盐分。它不能有效去除比目的片段短的小片段。实际上,它是一种脱盐的作用。这种方法一般不会对普通PCR反应产生影响。对于需要用于测序、克隆的引物不能使用这个级别。   
②OPC (Oligonucleotide Purification Cartridge)纯化: OPC纯化是根据DNA保护基(DMT基)和树脂间的亲合力作用的原理进行纯化目的DNA片段。OPC法纯化的DNA纯度大于95%。此级别制品可用作PCR引物、DNA测序引物、各种探针等。该级别只提供长度在35 mer以下的合成DNA制品。序列更长时,制品的纯度得不到保证。
③PAGE (Polyacrylamide Gel Electrophoresis)纯化:  PAGE纯化法是使用变性聚丙烯酰胺凝胶电泳,对DNA片段进行分离,然后从凝胶中回收目的DNA的方法。PAGE纯化法也是一种非常有效的DNA纯化方法,纯化后的DNA纯度大于95%,对长链Oligo DNA (大于45 mer)的纯化特别有效。如订购的DNA欲用作RT-PCR引物、各种探针,或用于PCR克隆测序、定点突变等,请选用PAGE纯化制品。
④HPLC  (High Performance Liquid Chromatography) 纯化:HPLC纯化是使用高效液相色谱的原理,对DNA片段进行纯化。纯度可以大于99%。由于制品纯度非常高,使用本法纯化的DNA制品可适用于各种基因工程实验。特别是:PCR克隆、定点突变、人工合成基因等。不过,本法只对纯化较短序列 (<40 mer)特别有效,合成更长序列 (≥40 mer)时,PAGE纯化要优于单纯的HPLC纯化。尽管对于较长序列 (≥40 mer),PAGE纯化效果要优于HPLC纯化,但如果实验对制品的纯度要求非常高,HPLC与PAGE双重精制会提供更好的制品纯度。该法的弱点是成本较高,批量生产效率不高。


引物的稀释与保存
1、引物的稀释
一般合成引物总量为2 OD,分装成两管,每管1 OD(一般仅稀释一支,另一支置于-20℃冰箱备用)
(1)12000 rpm 离心3-5分钟。因合成的引物常以干粉的形式提供,真空干燥后呈薄膜状或者粉末状附在离心管中,为了防止开盖时引物干粉散失故稀释前最好离心,使之集中于管底。
(2)轻轻打开管盖,加入适量的无菌TE(pH8.0)或者双蒸水(最好要用调整过pH8.0值的双蒸水)稀释至所需浓度。加入的体积参照n moles per OD中的说明。稀释引物,一般先配成储存液(100 μM),再吸取一部分配成工作液(10 μM),分装成小管。这样的好处是引物不容易降解,引物忌讳反复冻融。
(3)振荡后瞬时离心,静置待用

2、引物的保存
(1)未稀释的引物干粉很稳定,放置于-20℃可以保存1年。
(2)储存液(100 μM)放置于-20℃也可以长期保存.
(3)工作液(10 μM)短期内经常使用(1-2周),可放置在4℃下保存,长期保存请放置于-20℃。
(4)荧光标记引物请避光保存。
4楼2012-12-07 09:20:35
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