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【求助/交流】求解蛋白质分离纯化的难题
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银虫
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[交流]
【求助/交流】求解蛋白质分离纯化的难题
大家好,最近在做蛋白质的分离纯化实验,实验中遇到了一些难题,还请高手指点。
我做真菌产一种酶的分离纯化,但是该菌也产很多多糖,不知用什么办法除去?
对发酵液盐析的蛋白质实验时,经过离心,得到的片状物浮在液面上,管底部液体澄清,没有沉淀,请问这是什么原因,怎么解决?
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1楼
2011-03-11 18:15:09
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小木虫(金币
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):给个红包,谢谢回帖交流
发酵液中加入硫酸铵达到一定的饱和度之后,理论上是绝对有蛋白质沉淀下来的,即使没有蛋白质沉淀,那至少发酵液里的菌丝碎片和培养基不溶成分也会沉淀。没有沉淀就说明沉淀跑到液体上层去了。这令我想到一个现象,双水相。
硫酸铵是无机盐,达到一定浓度时会与一些有机物形成双水相,上相为有机相,下相为无机相。
建议尝试一下双水相去除发酵液杂质和有机杂质,之后无机相继续加入硫酸铵盐析。这样,碎片、色素、有机物、杂质蛋白质都能去除很多。
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9楼
2011-03-11 21:49:21
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11楼
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892091690
at 2012-03-14 12:06:00:
我是从米曲霉麸皮曲中提取a-淀粉酶 要怎么处理呢?
固体曲加水用果酱机粉碎,浸泡一小时,离心即可,这是我现用的方法。
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12楼
2012-03-15 01:03:03
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1349019楼
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892091690
at 2012-03-15 10:44:59:
用研钵捣碎行么?
不好,孢子在曲干的时候会飞得到处都是。
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15楼
2012-03-15 23:11:50
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1349426楼
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892091690
at 2012-03-17 12:18:08:
我在提取淀粉酶时用硫酸铵盐析沉淀 但是用量不知道多少 自己随便加了大约原菌液的5倍 后来一些列步骤下来 大概稀释了200倍 测OD值时怎么测都是0~0.100之间的数值 是不是我稀释的倍数太大了?如果有3毫升原菌液, ...
这个,有没有测过酶活力残留多少?原菌液的5倍是什么意思?感觉需要整理一下,说得详细一点。
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17楼
2012-03-17 18:58:27
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1350208楼
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Originally posted by
892091690
at 2012-03-22 12:52:05:
我用DNS法测固态发酵所产淀粉酶活性时 参比管中是不加淀粉的粗酶液,测定管是加了淀粉的酶液,测得结果要么负值要么0~0.1之间的数值,可能是什么原因呢?一定要用蒸馏水做参比吗?我看有些文献中还设有对照管 没 ...
国内的论文要选择性地看,有些是作假的。
2.2.6.1.4淀粉酶活力的测定
(1)收集发酵上清液并作适当稀释。
(2)在2mL EP管中加入350µL含0.25%可溶性淀粉的磷酸氢二钠-柠檬酸缓冲液,在已调整至需要温度的水浴锅中预热3min;
(3)取淀粉酶粗酶液50µl加入至缓冲液中;
(4)到达设定时间后,每管加0.8ml DNS试剂终止酶反应;
(5)沸水煮5 min后冷水冷却,瞬时离心将附着在管壁上的液体甩下;
(6)沸水煮5min的灭活上清液作同样处理作为对照;
(7)取200µl加到血清板上,测定540nm处光吸收值;
每次实验设三个重复,粗酶液活力计算依照以下方法:
G×n×20
1ml发酵上清液所含有酶活单位= ——————
1000
式中G:经淀粉酶作用后释放的葡萄糖量;n:上清液稀释倍数;1000:释放的葡萄糖量µg换算至mg;20:参与反应的粗酶液的量50µl换算至1mL
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20楼
2012-03-22 14:19:01
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µl为乱码,微升
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21楼
2012-03-22 14:20:37
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1364657楼
:
Originally posted by
新艺
at 2012-09-09 10:55:30
不知道楼主,用没用这个朋友的方法。我以前也遇到过类似楼主的情况,之前是从真菌发酵菌丝体中提取蛋白的,也是加了硫酸铵后发现底部没沉淀,而在上层出现了絮状物续集,但是在上层用分液漏斗收集了之后,后续试验 ...
我后来没有再用双水相,因为方法不止一种,有可能很不容易的解决了问题,才发现可以绕过问题,还有别的方法。
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23楼
2012-09-09 15:18:26
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