这位同学，你的上样量太大了的结果，可以把你的样品先稀释一下再上样。先稀释5倍看看吧，不行的话少上一点，上样量蛋白太多了。

上样量太大，或者把裂解液过滤纯化下再电泳。

你试试离心取上清上样

样品制备的问题，不是跑胶的问题，建议重新做样品再跑胶看看

上样量太大，逐步两倍的稀释一下，跑一下就知道了

楼主的样品电泳时不仅带非常宽甚至可以说是弥散，所以不可能是段春上样过多的问题，样品处理的也不好。电压也可考虑调整。
1.样品处理（充分溶解样品）：根据样品分离目的不同，在上样前对样品进行的溶解处理主要有三种处理方法：还原SDS处理、非还原SDS处理、带有烷基化作用的还原SDS处理。
（1）还原SDS处理：在上样buffer中加入SDS和DTT(或Beta巯基乙醇)后，蛋白质构象被解离，电荷被中和，形成SDS与蛋白相结合的分子，在电泳中，只根据分子量来分离。一般电泳均按这种方式处理，样品稀释适当浓度，加入上样Buffer，离心，沸水煮5min，再离心加样。
（2）带有烷基化作用的还原SDS处理：碘乙酸胺的烷基化作用可以很好的并经久牢固的保护SH基团，得到较窄的谱带;另碘乙酸胺可捕集过量的DTT，而防止银染时的纹理现象。100μl样品缓冲液中10μl 20%的碘乙酸胺，并在室温保温30min。
（3）非还原SDS处理：生理体液、血清、尿素等样品，一般只用1%SDS沸水中煮3min，未加还原剂，因而蛋白折叠未被破坏，不可作为测定分子量来使用。
2.保持各种蛋白质样品和Marker在上样前能够充分溶解，上样前最好离心一下，实在溶解不掉的颗粒就去掉。
3.减少上样量，楼主的样品应该稀释十倍后再上样。
4.可以考虑加高电泳时，浓缩胶的电压为90-100 V，分离胶的电压到120V-200V，；浓缩胶和分离胶有时候可能都设成150 V也能电泳成功。
5.上样前要煮沸样品蛋白质，