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汕头大学海洋科学接受调剂
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飘零的叶子

新虫 (小有名气)

[求助] 蛋白透析过程中出现浑浊

我的目的蛋白是胞内可溶表达,破菌后离心取上清,将破碎上清对ph7.6的Tris-HCl缓冲液进行透析,透析过程中透析袋内出现浑浊,破菌缓冲液是含0.5M NaCl的ph8.5的Tris-HCl溶液,哪位大侠知道为什么透析过程中为什么会出现浑浊,该如何改进实验方案?!
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zhoupeng87

版主 (文学泰斗)

优秀版主优秀版主

【答案】应助回帖

感谢参与,应助指数 +1
是不是因为缓冲液是含0.5M NaCl
3楼2013-05-11 15:50:59
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查看全部 19 个回答

不转录的DNA

金虫 (小有名气)

【答案】应助回帖

★ ★ ★ ★ ★ ★ ★ ★ ★ ★
感谢参与,应助指数 +1
gyesang: 金币+5, MolEPI+1, 中肯的建议! 2013-05-11 20:43:52
飘零的叶子: 金币+5, ★★★很有帮助 2013-05-12 09:40:06
一般我们做蛋白先是破碎,再纯化,然后透析!
虽然不知道你破菌之后,透析蛋白用于干嘛?我猜可能是过阳离子柱是吧?
1).因为你破碎之后,上清中是含有许多种类蛋白的,蛋白浓度越高,protein越容易Aggregated,然后形成沉淀!可能沉淀的并不是你的蛋白,而是杂蛋白!
我经常将一部纯化之后!的蛋白流出,放置在4度,第二天观察发现蛋白变浑浊了,离了心之后,分别取上清与沉淀电泳,结果显示我的蛋白仍在上清!

2).通过透析换buffer来改变pH,可能会改变许多蛋白质的正确构象,使蛋白发生沉淀;也有可能是因为pH的改变刚好经过他的等电点,所以发生了沉淀!如果你的目的蛋白PI值在7.6~8.5之间,那么沉淀的可能是你的蛋白·····
3). 你的破碎buffer中含有500mM的盐,不知道你的透析buffer中含不含有?
总之,我也不知道你沉淀的蛋白是否是你的蛋白,你需要将其离心之后,分别取上清和沉淀跑一次SDS-PAGE!

你的方案得改进:
1. 最好在你的目的蛋白前加个标签,His或GST的。如果就只需要目的protein!!!那就在标签之后加个酶切位点吧!经过一步纯化之后,蛋白的浓度和纯度都会得到提高,一步纯化之后再透析不迟啊!
2.透析还是比较慢的,建议你用脱盐柱G25换你的buffer!
就这么多吧,希望能给你点建议!
长得比我英俊的,没我有才华!有才华的,没我长得俊!
2楼2013-05-11 15:35:50
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草蔻年华

新虫 (小有名气)

【答案】应助回帖


感谢参与,应助指数 +1
飘零的叶子(gyesang代发): 金币+1, 鼓励回帖应助! 2013-05-13 12:51:12
你的蛋白的等电点是多少,是不是蛋白析出了,可以调节透析液 的PH试试。
4楼2013-05-11 20:44:17
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凌波丽

专家顾问 (知名作家)

【答案】应助回帖

★ ★ ★ ★
感谢参与,应助指数 +1
飘零的叶子: 金币+3, 有帮助 2013-05-13 09:31:03
飘零的叶子(gyesang代发): 金币+1, 鼓励回帖应助! 2013-05-13 12:51:02
液体浑浊就是其中的溶质的溶解度低,提高溶质的溶解度即可。让溶液pH离开蛋白质的pI,但是太酸或太碱,以免蛋白质变性,引起更多浑浊;另外,可能是其他的非目的的杂质太多了,离心、分级沉淀、层析分离出目的蛋白质,许多时候杂质不好去除,那么就想方设法把分离出目的蛋白质即可,最好的办法之一:亲和层析,可以用GST,(His)6标签,也可以不用。直接用目的蛋白质制备当克隆抗体(可以交给生物技术公司去做,最多6个月应该可以),然后用抗体-抗原亲和层析柱分离提纯。
5楼2013-05-11 22:43:45
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