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consist10金虫 (正式写手)
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[求助]
求助GST纯化,凝血酶酶切!谢谢
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用pGEX-4T-1载体表达HPV18 L1蛋白,为可溶性表达。由于菌体上清中有分子伴侣GroEL存在,在进行GST纯化前,先后加入ATP, MgCl2,KCL,20%甘油和3.5M尿素去除伴侣,13000rpm,4度离心。将菌体上清直接进行GST纯化,用含有3mM DTT,0.2M Nacl,1mM EDTA的50 mM Tris pH 8.0溶液洗去杂蛋白后, 用含有75mM还原型谷胱甘肽,0.1M Nacl的50mM Tirs(pH9.0)洗脱HPV18 L1-GST融合蛋白。看文献中有在凝血酶中加入0.1-0.2M Nacl和2.5mM 氯化钙增加酶活性的,于是将洗脱产物用含有这两种成分的20 mM Tris pH 8.4溶液进行4度透析,在透析6-10小时左右发现有融合蛋白沉淀析出,请教大家我的实验操作存在什么问题。该如何进行凝血酶酶切切去GST标签,酶切体系是什么?酶切时要注意什么问题?如何保存GST纯化的融合蛋白产物? 另外,我也尝试了将菌体上清液挂在GST树脂上,用50 mM Tris pH 8.0 洗去杂蛋白,然后加入3.5mL 凝血酶(用25mM Tris pH8.0溶解,浓度为20 U/mL)。在凝血酶完全进入GST树脂后,4度静止作用20小时,接着用Tris洗脱柱子,洗出来的是凝血酶。最后用还原型谷胱甘肽洗脱柱子,洗出来的是HPV18 L1-GST融合蛋白,也含有少量凝血酶。凝血酶柱上酶切的失败原因是什么。文献中有用25mM Tris pH9.0溶解凝血酶,然后进行酶切的,这样可行吗?另外, GST纯化时,均是4度循环上样3小时,但挂柱效率仍然不高,如何提高挂柱效率呢?由于急于毕业,实验遇到这个难题,十分着急。希望大家给予指教,十分谢谢! PS:混数要金币的请绕行! |
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