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consist10金虫 (正式写手)
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[求助]
求助GST纯化，凝血酶酶切！谢谢
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用pGEX-4T-1载体表达HPV18 L1蛋白，为可溶性表达。由于菌体上清中有分子伴侣GroEL存在，在进行GST纯化前，先后加入ATP, MgCl2，KCL，20%甘油和3.5M尿素去除伴侣，13000rpm，4度离心。将菌体上清直接进行GST纯化，用含有3mM DTT，0.2M Nacl，1mM EDTA的50 mM Tris pH 8.0溶液洗去杂蛋白后， 用含有75mM还原型谷胱甘肽，0.1M Nacl的50mM Tirs（pH9.0）洗脱HPV18 L1-GST融合蛋白。看文献中有在凝血酶中加入0.1-0.2M Nacl和2.5mM 氯化钙增加酶活性的，于是将洗脱产物用含有这两种成分的20 mM Tris pH 8.4溶液进行4度透析，在透析6-10小时左右发现有融合蛋白沉淀析出，请教大家我的实验操作存在什么问题。该如何进行凝血酶酶切切去GST标签，酶切体系是什么？酶切时要注意什么问题？如何保存GST纯化的融合蛋白产物？ 另外，我也尝试了将菌体上清液挂在GST树脂上，用50 mM Tris pH 8.0 洗去杂蛋白，然后加入3.5mL 凝血酶（用25mM Tris pH8.0溶解，浓度为20 U/mL）。在凝血酶完全进入GST树脂后，4度静止作用20小时，接着用Tris洗脱柱子，洗出来的是凝血酶。最后用还原型谷胱甘肽洗脱柱子，洗出来的是HPV18 L1-GST融合蛋白，也含有少量凝血酶。凝血酶柱上酶切的失败原因是什么。文献中有用25mM Tris pH9.0溶解凝血酶，然后进行酶切的，这样可行吗？另外， GST纯化时，均是4度循环上样3小时，但挂柱效率仍然不高，如何提高挂柱效率呢？由于急于毕业，实验遇到这个难题，十分着急。希望大家给予指教，十分谢谢！ PS：混数要金币的请绕行！ |
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