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lilirong2009

铜虫 (小有名气)

[求助] 短片段PCR扩增

我最近在扩增三个目的条带,长度分别是65,144和236bp。我用的25微升体系,镁离子的终浓度是2.5mM,酶是1.25u,引物的Tm均为55℃。PCR条件为:
(1)95℃ 3min
(2)95℃ 30s
(3)60-50 ℃ (gradient 10℃)40s
(4)72℃ 45s
(5)(2)-(4)39
(6)72℃ 10min
(7)4℃ forever
用上面的变化退火条件下65bp和144bp的目的条带均扩增出来,且每个温度都可扩增出来条带,但是量不大,电泳条带较暗。236bp的条带在8个变化温度下均未扩增出来。今天下午针对236bp的目的条带,我把dNTP、模板和酶都增加0.2微升,PCR条件中退火温度变为60-45℃ (gradient 15℃)45s,延伸时间变为50s,结果如图中的a-j条带,但是也出现了非特异性条带,只有退火温度为57.5℃的未出现非特异性,但是条带很淡。我在这个PCR条件下同时还做了64bp和144bp的样(但体系加样量不变),结果如图中1-6条带,条带还是暗淡。针对此实验,有两问题忘高人帮忙:
(1)对于236bp目的条带的扩增如何改动以减少非特异性条带
(2)对于3个目的条带如何增加产量
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lidonghong

金虫 (正式写手)

【答案】应助回帖

感谢参与,应助指数 +1
直接用你的PCR产物为模板在进行PCR,循环数改为30-35
生物化学与分子生物学
2楼2012-08-27 10:32:49
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huangguoqing

木虫 (正式写手)

【答案】应助回帖

★ ★
感谢参与,应助指数 +1
小丹木木: 金币+2, 鼓励交流 2012-08-27 13:32:47
增加模板和引物的量会增加产物的量,但产物的特异性会降低。你那两个短片段的可以适当增加点模板或者引物的量,236bp的可以增加点退火温度试试。再有,问一个问题,你是做RT-PCR么?
3楼2012-08-27 10:50:10
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lilirong2009

铜虫 (小有名气)

我做的普通PCR
4楼2012-08-27 11:28:09
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reallpf

木虫 (正式写手)

【答案】应助回帖

★ ★ ★
感谢参与,应助指数 +1
小丹木木: 金币+3, MolEPI+1, 鼓励积极解答问题 2012-08-27 13:33:10
对于特异性,你的pcr结果已经不错了,个人不建议你为了增加特异性而再增加退火温度;pcr的循环数一般20--35个循环足矣,到后期你里面的dNTP也都没有了,都是无效循环。所以建议你减少循环数;同时也建议你减少退火时间到25s或30s。
对于产量,有几个建议:
增加PCR平行数,以量增加最后产量;  将你的pcr产物稀释100--200倍后作为模板再进行pcr;   利用touch down PCR,一定程度可以增加。
对于pcr,建议不要加太多酶,不出条带应该继续降低退火温度。一般pcr的退火温度比算出来的Tm值少5--10度。
以上仅为个人建议。
5楼2012-08-27 12:23:04
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gwd0312

木虫 (正式写手)

“无冕之王”

【答案】应助回帖

感谢参与,应助指数 +1
条带不亮,可以用回收片段做模版重新P一下,也可以适当增加循环次数!
持之以恒、永不放弃!
6楼2012-08-27 12:55:06
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sd3824289

木虫 (正式写手)

【答案】应助回帖

感谢参与,应助指数 +1
建议楼主设置温度梯度!结果很快就有了,选择特异性最好的那个温度,不过这些梯度的温度要提前做好记录的!
祝楼主好运!
坚持,就像流星,即使知道最后的结果,也要勇敢的走到最后!
7楼2012-08-27 16:33:14
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lilirong2009

铜虫 (小有名气)

温度梯度做了的,后来拿了h管的温度来进行PCR,结果什么条带都没有
8楼2012-08-27 16:44:55
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