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【SOS】PUC18 SphI和PstI 酶切
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构质粒ING
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【SOS】PUC18 SphI和PstI 酶切
各位大侠,我现在要用PUC18构建质粒,用到这个载体上的SphI和PstI这两个酶切位点,我需要将目的基因通过这两个位点插入PUC18。通过分析,这两个酶切位点是挨着的,那么
1.如果我使用TAKARA共H buffer同时双酶切的话,可以把这两个酶切位点切开么?
2.我查了一下PstI酶切位点的保护碱基,如果酶切效率大于90的话,是有这两种保护碱基的添加方式:AA
CTGCAG
AACCAATGCATTGG
AAAA
CTGCAG
CCAATGCATTGGAA
我怎么觉得这么诡异呢…… 还请大家指点迷津!!
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1楼
2012-06-20 15:38:35
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构质粒ING
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另外,有没有战友用TAKARA 的SalI和BamHI共BUFFER酶切过?
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2012-06-20 15:50:51
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jqq1985
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很有帮助
2012-06-21 10:47:56
1,紧挨着的酶切位点最好分布酶切,不然效率比较低。
2,一般酶切位点的保护碱基只需要额外多出三个碱基就可以了。
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3楼
2012-06-20 20:41:00
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2012-06-21 10:49:52
1.选酶切位点时,尽量离远一点。这样酶切的干净,自连少。像你这种情况就按楼上说的分布酶切。
2.PstI酶切效率还行,你写的都行,主要看下你上下游引物的退火温度,差值尽量控制在3度以内。
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4楼
2012-06-20 20:56:21
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jqq1985
at 2012-06-20 20:41:00
1,紧挨着的酶切位点最好分布酶切,不然效率比较低。
2,一般酶切位点的保护碱基只需要额外多出三个碱基就可以了。
其他酶切位点的保护碱基都比较正常,就是这个PstI的保护碱基很诡异,我查了一下它的保护碱基,如果加三个的话,酶切效率特别低……
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5楼
2012-06-21 10:49:41
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5楼
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构质粒ING
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其他酶切位点的保护碱基都比较正常,就是这个PstI的保护碱基很诡异,我查了一下它的保护碱基,如果加三个的话,酶切效率特别低……...
哦,是吗。但是takara说明书上说可以的啊。并且我一直都是加ccc作为保护碱基。
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6楼
2012-06-21 11:40:49
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takara没有SPH1酶 NEB有
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构质粒ING
at 2012-06-20 15:50:51
另外,有没有战友用TAKARA 的SalI和BamHI共BUFFER酶切过?
我之前做过,虽然SalI的酶切效率不是很好,但还是最终获得了阳性克隆。我是直接将目的片段和质粒酶切过夜以后跑电泳回收,16℃连接6-12h再做转化。
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8楼
2012-12-12 20:40:52
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