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有没有人做过胆红素的液相,我的峰分叉了
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王丽84
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有没有人做过胆红素的液相,我的峰分叉了
已有1人参与
以为是柱子的原因,但是换了一根同样分叉了,对照品用氯仿溶解,都没有超声直接振摇溶解的。
看文献报道是不稳定,但是也只是峰面积减小,不会分叉啊
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1楼
2012-06-14 12:18:42
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weijie302
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【答案】应助回帖
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2012-06-17 13:55:13
soundhorizo: ACI+1
2012-06-17 13:55:32
我觉得可能性比较大原因是胆红素在流动相中的溶解性不好造成的,建议在能检测到的基础上稀释样品。另外,若是必须用氯仿溶解,进样体积不要太大,最好控制在1~2微升左右,进样体积太大的话氯仿与流动相兼容性不好。
我以前就碰到过因为溶解度问题峰分叉的现象,减小进样量就可以解决了。
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6楼
2012-06-14 21:32:55
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【答案】应助回帖
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2012-06-17 13:55:00
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3楼
:
Originally posted by
王丽84
at 2012-06-14 14:31:53
我看有的文章也是用氯仿溶解的,易于溶于氯仿,我溶解完直接进样还是峰的前后有小包...
1、色谱柱未必适合
2、溶剂效应
3、样品如溶剂及流动相相容性低
4、样品过载
建议逐一排除
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守候在风中的宁静。
4楼
2012-06-14 14:56:24
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氯仿溶解样品不合适,可能会有溶剂效应
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2楼
2012-06-14 12:59:12
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2楼
:
Originally posted by
houqian387
at 2012-06-14 12:59:12
氯仿溶解样品不合适,可能会有溶剂效应
我看有的文章也是用氯仿溶解的,易于溶于氯仿,我溶解完直接进样还是峰的前后有小包
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3楼
2012-06-14 14:31:53
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【答案】应助回帖
同意楼上观点!
我没什么补充的了
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5楼
2012-06-14 15:05:37
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6楼
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Originally posted by
weijie302
at 2012-06-14 21:32:55
我觉得可能性比较大原因是胆红素在流动相中的溶解性不好造成的,建议在能检测到的基础上稀释样品。另外,若是必须用氯仿溶解,进样体积不要太大,最好控制在1~2微升左右,进样体积太大的话氯仿与流动相兼容性不好。 ...
因为449nm检测信号已经很弱了,溶解性很好的,都没有超声振摇溶解的了
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7楼
2012-06-15 11:52:46
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7楼
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王丽84
at 2012-06-15 11:52:46
因为449nm检测信号已经很弱了,溶解性很好的,都没有超声振摇溶解的了...
我说的不是氯仿溶解性不好,而是说样品进入色谱柱后在流动相体系中溶解性不好。试想你的样品很好的溶于氯仿后,进样,然后大量的流动相带着样品进入色谱柱,如果流动相溶解性不好的话,就会在色谱柱柱头析出,析出后的样品又被后续的流动相溶解,这样整个样品就会在色谱柱上分段,结果出现两个峰是很正常的事情。
若可以的话,用起始条件的流动相溶解样品,这样是最保险的。但是我查到胆红素的水溶性和醇溶性都不好,所以在能检到的基础上尽量减小进样量,看看能否解决分叉的问题吧。
对了,说了这么多,你做的是反向色谱吧?
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8楼
2012-06-15 14:50:38
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8楼
:
Originally posted by
weijie302
at 2012-06-15 14:50:38
我说的不是氯仿溶解性不好,而是说样品进入色谱柱后在流动相体系中溶解性不好。试想你的样品很好的溶于氯仿后,进样,然后大量的流动相带着样品进入色谱柱,如果流动相溶解性不好的话,就会在色谱柱柱头析出,析出 ...
恩,反相的,流动相是甲醇:氯仿:1%磷酸( 81 : 13 : 6),我改了下甲醇:氯仿:1%磷酸( 80 : 12 : 8)。前后两个小峰就和主峰基线分离了
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9楼
2012-06-17 13:37:13
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2012-07-02 11:07:32
用流动相稀释标样试下,进样量小点
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10楼
2012-07-02 09:24:54
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